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植物组织培养实验

植物组织培养实验. 课件制作:沙莎. 实验一 培养基贮备液(母液)的配制. 目的与要求 : 熟悉 MS 培养基的组成,掌握贮备液的配制方法 . 实验步骤: 称量 分别溶解 混合 定容。. 一, MS 培养基的组成. 1 、大量成分→贮备液 I mg /L NH 4 NO 3 1650 KNO 3 1900

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植物组织培养实验

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  1. 植物组织培养实验 课件制作:沙莎

  2. 实验一培养基贮备液(母液)的配制 • 目的与要求: 熟悉MS培养基的组成,掌握贮备液的配制方法. • 实验步骤: 称量 分别溶解 混合 定容。

  3. 一,MS培养基的组成 1、大量成分→贮备液I mg/L NH4NO3 1650 KNO3 1900 CaCl2 2H2O 440 MgSO4 7H2O 370 KH2PO4 170 配制20倍浓度贮备液500mL.

  4. 2、微量成分→贮备液II mg/L KI 0.83 H3BO3 6.2 MnSO4 4H2O 22.3 ZnSO4 7H2O 8.6 Na2MoO4 2H2O 0.25 CuSO4 5H2O 0.025 CoCl2 6H2O 0.025 配制100倍浓度贮备液100mL.

  5. 3、铁→贮备液III mg/L FeSO4 7H2O 27.8 Na2 EDTA 2H2O 37.3 4、有机成分→贮备液IV mg/L 肌醇100 烟酸0.5 盐酸硫胺素(VB1) 0.1 盐酸吡哆醇0.5 甘氨酸2 配制100倍浓度贮备液100mL. 配制100倍浓度贮备液100mL.

  6. 二,常用生长调节剂 • 6-BA:1mg/mL(溶于少量1N盐酸后以蒸馏水定容)。 • NAA:1mg/mL(先用少量95%乙醇溶解后以蒸馏水定容)。

  7. 三、作业: • (一)一般可将MS培养基分为哪四个部分?分别含有几种试剂?各种试剂的浓度(mg/L)如何? • (二)如需配制MS培养基的20×的贮备液I量为500 mL、100×的贮备液II、III和IV各100 mL以及BA和NAA(浓度为1 mg/mL)各50 mL,则应分别称取多少量的各种试剂?注意要点有哪些?

  8. 实验二 固体培养基的配制与灭菌 一、实验目的: 学习、掌握植物组织固体培养基的配制和灭菌方法。 二、实验步骤: 称量 混合 调pH值 灭菌

  9. 称量:按每瓶培养基终体积50mL计,称取适量的琼脂(常用量8g/L)和蔗糖(常用量30g/L),置于大烧杯中,加蒸馏水至需配培养基终体积的3/4左右,(加热)使之溶解。称量:按每瓶培养基终体积50mL计,称取适量的琼脂(常用量8g/L)和蔗糖(常用量30g/L),置于大烧杯中,加蒸馏水至需配培养基终体积的3/4左右,(加热)使之溶解。 混合:分别加入一定量的贮备液I、II、III、IV和生长调节物质及其它特殊补加物,再加蒸馏水直至需配培养基的终体积。 调pH值:充分混合后,在60℃水浴条件下用0.1 mol/L的NaOH和0.1 mol/L的HCl调节培养基的pH值至5.8。 灭菌:封严培养容器口后,120 ℃灭菌20 min后,将培养基取出,置于水平台子上,在室温下冷却,备用。

  10. 实验三 外植体材料的预处理、消毒及接种 • 一、实验目的: 熟悉外植体材料的预处理,掌握其消毒和接种方法。

  11. 二、方法步骤: (一)对采来的植物材料进行适当的预处理。除去不需要的部分,将所需部分切割至适当大小,置自来水龙头下流水冲洗几分钟至几小时,主要视植物材料清洁程度而定。这在污染严重时特别有用。

  12. (二)用洗衣粉水(1~2角匙洗衣粉/100 ml水)等浸洗上述植物材料约5 min,再用自来水冲净洗衣粉水。这是进一步减少污染的处理。 同时配制消毒液:50%次氯酸钠溶液。

  13. (三)将接种用具、无菌水等从80℃烘箱中或直接从高压灭菌器中取出,置于超净工作台上。打开超净工作台中的紫外灯,在进行紫外线灭菌处理至少30 min后关掉紫外灯。

  14. (四)操作人员洗手擦干,换上洁净工作服,戴上帽子以免头发散落以及带来污染。坐到超净台前,并将装有经湿热灭菌培养基的培养瓶、配好的消毒液、洗净沥干的植物材料置于超净工作台上,用70%酒精棉球擦手与器具外壁,即可对经上述预处理的植物材料进行表面灭菌处理,自此以后各步均须在超净工作台上操作。(四)操作人员洗手擦干,换上洁净工作服,戴上帽子以免头发散落以及带来污染。坐到超净台前,并将装有经湿热灭菌培养基的培养瓶、配好的消毒液、洗净沥干的植物材料置于超净工作台上,用70%酒精棉球擦手与器具外壁,即可对经上述预处理的植物材料进行表面灭菌处理,自此以后各步均须在超净工作台上操作。

  15. (五)具体首先将经上述预处理、沥干水的植物材料放入广口瓶或烧杯,向其中倒入新鲜配制、浓度一定并且加有一定量(通常为灭菌剂消毒液的0.5%,或每100 mL消毒液滴加10~15滴)Tween-80(土温-80)等表面活性剂的消毒液适量(液面高度超出植物材料至少0.5 cm),开始计算灭菌时间。也可在使用上述灭菌剂之前,先将植物材料浸于70%乙醇灭菌10~30秒。

  16. (六)在持续灭菌时间内定时用玻璃棒轻轻搅动,以促进植物材料各部分与消毒液充分接触,驱除气泡,使灭菌彻底。在灭菌时间结束前1 min时,即可开始用玻璃棒等轻轻压住植物材料将消毒液慢慢倒入废物缸,注意勿使植物材料滑出。接着立即倒入适量无菌水,轻搅植物材料以清洗去除灭菌剂残留。一般表面灭菌时间的计算是从倒入消毒液开始,到倒入无菌水为止。无菌水的清洗时间每次约3 min;清洗5次。

  17. (七)倒出、沥去最后一次清洗用水,开始进行植物材料的切割及接种。(七)倒出、沥去最后一次清洗用水,开始进行植物材料的切割及接种。 逐一取出经上述灭菌处理的植物材料,置于下面垫有经灭菌处理的培养皿(或小白瓷碟)的无菌纱布或滤纸上,左手拿小镊子,右手拿解剖刀,切除各切段或切块上被灭菌剂毒坏的部分。如有必要,也可再行切分。在完成切割后,将解剖刀和小镊子在95%乙醇中浸蘸一下,在酒精灯焰上灼烧灭菌之后放回原处,以便待冷却后下一切割再用。

  18. (八)接着,左手拿培养瓶,将培养容器口外壁在靠近酒精灯外焰处转燎数秒,以将其可能带有的微生物等固定于原处;在酒精灯焰附近处,用右手拇指与食指配合将瓶塞打开,并将其夹于左手无名指与最小指之间;再将培养瓶口在酒精灯焰上轻转灼烧灭菌;以右手拇指与食指配合,用大镊子夹紧一外植体准确送入培养容器,并将其轻轻地半插入固体培养基;将大镊子在95%乙醇中浸蘸一下,在酒精灯焰上灼烧灭菌之后放回原处,以便待冷却后下一操作再用;将培养瓶口及瓶塞分别在酒精灯焰上小心地轻转灼燎数秒;盖好瓶塞,旋紧,将其置于超净工作台的适当位置。(八)接着,左手拿培养瓶,将培养容器口外壁在靠近酒精灯外焰处转燎数秒,以将其可能带有的微生物等固定于原处;在酒精灯焰附近处,用右手拇指与食指配合将瓶塞打开,并将其夹于左手无名指与最小指之间;再将培养瓶口在酒精灯焰上轻转灼烧灭菌;以右手拇指与食指配合,用大镊子夹紧一外植体准确送入培养容器,并将其轻轻地半插入固体培养基;将大镊子在95%乙醇中浸蘸一下,在酒精灯焰上灼烧灭菌之后放回原处,以便待冷却后下一操作再用;将培养瓶口及瓶塞分别在酒精灯焰上小心地轻转灼燎数秒;盖好瓶塞,旋紧,将其置于超净工作台的适当位置。

  19. (九)在完成了该第一只培养容器的外植体接种操作后,用70%乙醇对超净工作台的台面进行擦拭灭菌,接着再进行第二只培养容器的外植体接种及超净台台面的灭菌,直至全部完成。(九)在完成了该第一只培养容器的外植体接种操作后,用70%乙醇对超净工作台的台面进行擦拭灭菌,接着再进行第二只培养容器的外植体接种及超净台台面的灭菌,直至全部完成。

  20. 三、作业: • 练习无菌操作;统计植物材料表面灭菌结果;分析污染原因;提出减少或避免污染的措施。

  21. 实验四 枝芽增殖培养基的设计与配制 一、实验目的: 学习、掌握枝芽增殖培养基的设计、配制方法。

  22. 二、方法步骤: (一)称取4 g琼脂和15 g蔗糖,加蒸馏水至需配培养基终体积500 mL的3/4,加热使之溶解,并在80℃热水浴中保温。 (二)分别加入一定量的MS培养基贮备液I、II、III和IV及NAA 0.25 mg,然后1~5各小组再分别加入各自不同量的BA(0.25;0.5;0.75;1及1.5 mg)。 (三)充分混匀后,用0.1 mol/L的NaOH和0.1 mol/L的HCl调节培养基的pH至5.8。定容至500 mL。 (四)将培养基分装到所选用的培养容器中,每个容器的装量不超过其最大容量的1/3。拧紧瓶盖。 (五)将装有培养基的培养容器置高压灭菌器中高压灭菌(120℃,20 min)。灭菌结束后从高压灭菌器中取出,置于平台上冷却,备用。

  23. 三、作业: • 在进行枝芽增殖培养基设计时,应注意哪些问题?

  24. 实验五 枝芽增殖培养的外植体的处理与接种 • 一、实验目的:学习、掌握枝芽增殖培养外植体的处理、接种方法。

  25. 二、方法步骤: • (一)将经湿热灭菌装有培养基的培养容器、接种用具等置于超净台上,打开超净台的紫外灯,灭菌处理30 min。 • (二)操作人员坐到超净台前,用浸有70%酒精的棉球擦超净台面、操作者手等部分。 • (三)点燃酒精灯,从装有无菌苗的培养瓶中取出无菌苗,置于无菌的培养皿中的无菌滤纸上,用灭过菌的刀和镊子配合操作,从叶柄处切下,将所有叶片去除,只留下近茎部的一小段叶柄。 • (四)将去除叶片后的茎,切分成带腋芽的茎段。 • (五)打开培养容器盖子,将茎段按其自然极性方向垂直插入培养基,盖好培养容器盖子,置于超净台上适当位置。对接种用具、超净台面、操作者手等进行适当灭菌处理,继续接种。如此操作,直至完成。

  26. 三、作业: • 进行增殖试验结果的观测、比较、记录和分析。

  27. 实验六 根再生诱导培养基的设计与配制 一、实验目的:学习、掌握根再生诱导培养基的设计、配制方法。

  28. 二、方法步骤: • (一)称取4g琼脂和15g蔗糖,加蒸馏水至需配培养基终体积 • 500 mL的3/4,加热使之溶解,并在80℃热水浴中保温。 • (二)分别加入一定量的MS培养基贮备液I、II、III和IV,然后1~5各小组再分别加入各自不同量的NAA(0.25;0.5;0.75;1及1.5 mg)。 • (三)充分混匀后,用0.1 mol/L的NaOH和0.1 mol/L的HCl调节培养基的pH至5.8。补加蒸馏水至培养基的终体积500 mL。 • (四)分装后,将装有培养基的培养容器置高压灭菌器中高压灭菌(120℃,20 min)。 • (五)将灭过菌的装有培养基的培养容器从高压灭菌器中取出,置于平台上冷却,备用。

  29. 三、作业: • 在进行根再生诱导培养基设计时,应注意哪些问题?

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