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Vectorologie

Vectorologie. Utilisation des systèmes viraux comme vecteurs d’expression de gènes. Etienne Decroly, CNRS Edecroly@free.fr. Utilisation des systèmes viraux comme vecteurs d’expression de gènes . Les virus constituent des systèmes d’expression spécialisés Question ?

Olivia
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  1. Vectorologie Utilisation des systèmes viraux comme vecteurs d’expression de gènes Etienne Decroly, CNRS Edecroly@free.fr

  2. Utilisation des systèmes viraux comme vecteurs d’expression de gènes • Les virus constituent des systèmes d’expression spécialisés Question ? Peut-on les utiliser pour exprimer selon nos besoins des protéines d’intérêt dans une cellule cible? • Oui, les virus sont à l’origine de plusieurs systèmes d’expression utilisés à ce jour • Thérapies génique • biotechnologies Exemples : phage display vecteurs d’expression viraux vaccination

  3. Efficacité Ciblage • Problèmes liés aux ADN nus : Vecteurs viraux courants (eucaryotes) • Vecteurs réplicatifs • Vecteurs se répliquant de manière autonome • Pas d ’utilisation en thérapie génique • Utilisation en biologie moléculaire, cellulaire, biochimie, biotechnologie à l ’échelle industrielle, vaccinologie et expression des protéines • Exemples : Pox Virus (Vaccinia virus) : cellules mammifères, tropisme large Baculovirus : cellules d ’insectes, expression très élevée ! Vecteurs dérivés non réplicatifs en cellules mammifères • Vecteurs non réplicatifs • Les virus recombinants ne se répliquent que dans des cellules exprimant les gènes essentiels à la réplication délétés dans la construction du vecteur : « packaging cell lines » • Utilisation en biologie moléculaire et thérapie génique • Exemples : Adénoviraux : Ad2 & Ad5 Rétroviraux : MLV, lentiviraux( HIV) Adéno associés : famille des parvovirus Alphavirus : SFV

  4. Ciblage et Expression Sécurité Production Caractéristiques recherchées pour un vecteur viral (thérapie génique) Tropisme cellulaire adaptable (choix des enveloppes virales) Régulation de la transcription possible (choix des promoteurs) Stabilité d’expression (intégration ou épisomes, immunogénicité faible) Matériel génétique inséré de grande taille (de 3 à 100kb) Recombinaison faible voir absente Toxicité faible (immunogénicité faible, intégration dirigée) Réponse immunitaire faible (expression minimum de gènes viraux) « Packaging cell lines » aisément cultivables Production de virus à hauts titres infectieux

  5. Comment construire un virus recombinant réplicatif ? • Identifier un gène non essentiel à la réplication, ou conditionnellement nécessaire • Remplacer ce gène non essentiel par le « trans gène » (TG)

  6. Poxvirus : cycle du virus de la vaccine Virus ADN double-brin linéaire (200 kb) • 10% des protéines totales de la cellule sont des protéines de la vaccine • Cycle entièrement cytoplasmique • Infection de tout type cellulaire mammifère et aviaire (sauf CHO)

  7. Virus de la vaccine Séquences du gène TK Transgène • Choix du promoteur • (précoce ou tardif) pro Promoteur Vaccine pro Cellules Mammifères MCS 5’ Infection 3’ Transfection Recombinaison homologue 0,1 à 0,5% Noyau Virus de la vaccine Recombinant (TK-/TG+) + virus WT (99,9%) Construction de virus recombinants • Le gène codant pour la protéine tymidine Kinase (TK) n’est pas essentiel à l’infection virale dans des cellules en division • Principe :Introduire le TG par recombinaison homologue dans le gène TK

  8. Sélection et purification des virus recombinants • C’est l’étape limitante : • Sélection des virus TK-: • en présence de BrdU (5-bromodéoxyuridine) , la TK phosphoryle le BrdU qui est incorporé dans le génome viral (létal) • sélection en incorporant un gène de résistance aux antibiotiques ou le gène lacZ (blanc bleu) • Purification des virus: • Par dilution limite (plage de lyse) • Plusieurs cycles nécessaires • Contrôle de l’expression des TG • PCR • Western Blot

  9. Avantages et limitations du système vaccine • Utilisation principale : expression de protéines en cellules mammifères • Constructions de virus recombinants : • Construction du plasmide difficile (recombinaison) • Choix possible du promoteur (précoce ou tardif, fort ou faible) • Sélection des virus recombinants et purification longues • Production de stocks de virus recombinants facile • Inconvénients • Les virus WT et recombinants sont infectieux et immunogène pour l ’homme (yeux) • Ce sont des virus infectieux… (L2 ou L3)  utiliser la souche Ankara MVA atténuée • La vaccine perturbe les métabolismes cellulaires :Expression des protéines endogènes  • Effet cytopathique : les cellules infectées meurent 48 h après infection • Infecte seulement les cellules en division • Avantages • Niveau d’expression élevé • Modifications post-traductionnelles ad-hoc (glycosylation, clivages protéolytiques) • Taille des inserts > 20kb • Production aisée de titres infectieux (1010 PFU/ml) • Choix du promoteur (précoce ou tardif) • Ancien vecteur de choix pour les vaccinations • Transcription cytoplasmique (pas de problème d ’export des ARNm, pas d ’épissage)

  10. Virus de la Vaccine (WT) pro T7pol 5’ 3’ Infection Cellules Mammifères Recombinaison homologue 0,1 à 0,5% Transfection Sélection et purification de virus de la vaccine recombinant exprimant la T7 Pol Noyau Système vaccine T7 Pol : transfection/infection (1) • Construction d’un virus de la vaccine recombinant exprimant la T7 Pol

  11. VV: T7 Pol 3. Infection Transgène pro ARNm Protéines MCS Noyau pro TG 2. Transfection Promoteur T7 Pol pro T7 polymérase exprimée par le VV Système vaccine T7 Pol : transfection/infection (2) Expression de gènes sous le contrôle de la T7 polymérase : 1. Construction d’un plasmide • Avantages/Inconvénients • Expression aisée de multiples constructions • La transfection est une étape limitante pour les productions industrielles • Transcription cytoplasmique (pas de problème d ’export des ARNm, pas d ’épissage)

  12. pHdépendante Phases tardives Phases très tardives Baculovirus Virus ADN double-brin circulaire (130Kb) Polyhédrine nécessaire pour l’infection d’un nouvel hôte arthropodes (lépidoptères, SF9)

  13. Séquences baculovirales polyhédrine Baculovirus Transgène 1. clonage Promoteur polyhédrine pro 3. Infection pro MCS Cellules SF9, SF 21 2. Transfection Recombinaison homologue 0,1 à 0,5% Noyau Baculovirus recombinant Formation de baculovirus recombinants • Particularités de la polyhédrine : • Niveau d ’expression très élevé (jusqu’à 50% du total cellulaire) • Protéines non essentielles à la propagation de l ’infection • Les virus recombinants ∆ polyhédrine ont une morphologie identifiable dans la cellule •  recombinaison homologue dans le gène de la polyhédrine.

  14. 99% de recombinants Vecteurs baculoviraux commerciaux

  15. Avantages et limitations des vecteurs baculoviraux • Utilisation principale : expression de protéines en cellules d’insectes, vaccins recombinants, production de protéines insolubles en bactéries. • Avantages • Promoteur très fort, niveau d’expression élevé • Modifications post-traductionelles proches du système mammifère • Glycosylations : high-mannose mais pas hybride et complexes • Transport et processing ad-hoc • Taille des inserts > 50kb • Production aisée de titres infectieux (1010 PFU/ml) • Pas d ’infection possible de l ’homme (restriction au niveau de la transcription) • Inconvénients • Virus lytique (chez l ’insecte) • La formation des virus recombinants est une étape limitante

  16. Vecteurs de deuxième génération pour thérapie génique • Le baculovirus est capable d’infecter des cellules mammifères (récepteur présent) • Toutefois ces gènes ne sont pas transcrits • L ’activation des unités transcriptionelles est restreinte aux cellules d’insectes •  L ’intégration d’un transgène (TG) en aval d’un promoteur eucaryote permet l ’expression du TG • Avantages • Production aisée de hauts titres infectieux • Tropisme large (récepteurs inconnus) • Pas de réplication ni de production de protéines virales chez l’hôte • Survie des cellules infectées (virus lytique chez l ’insecte) • Insert de grande taille (50 kb) et choix possible des promoteurs • Risque de recombinaison très faible • « Packaging cell lines » : pas de construction complexe (SF9) • Inconvénients • Pas d ’intégration, persistance limitée • Non déterminé • Réponse immunitaire ? • Infection des cellules quiescentes? Song SU, Boyce FM. Exp Mol Med. (2001) Mar 31;33(1):46

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