E N D
1. Validation d’une unité de production en réacteur Mario Jolicoeur, ing., Ph.D.
Professeur
Département de génie chimique
3. Problématique particulière Chimie de synthèse
Formation de produits secondaires, intermédiaires
Isoformes
Nombre élevé de réactions/étapes successives
Utilisation de produits dangereux (e.g. phosgène)
Étapes successives de concentration/purification
4. Problématique particulière Biotechnologie
Catalyseur
Cellule ou microorganisme en culture pure
Conditions de culture: température, pH, pO2, pCO2, etc.
Contaminants:
Les cellules hôtes: perte de rendements et pathogénécité de résidus
Contamination: pathogénécité (pyrogènes), immunogénicité
Mutations
Accumulation du produit
Formation de produits secondaires, intermédiaires
Isoformes et différence de bioactivité:
Protéines: patron de glycosylation
ADN: mutations
Cellules: différenciation/dédifférenciation/phénotype
Nombre élevé de réactions simultanées et en réseau
Utilisation de milieux de culture nutritifs complexes
Définit vs non-définit (sérums, extraits de levures, etc.)
Étapes successives de concentration/purification
5. Objectifs de la validation Assurer la reproductibilité du procédé de production
Qualité et Quantité du produit
Faciliter les étapes finales de purification
Diminution des coûts et reproductibilité de la qualité
Connaître les limites d’opération
Temps de réponse et diagnostiques de la performance
Connaître le cycle d’entretien
Prolonger la durée de vie des équipements
Assurer la conformité aux normes
6. Définition et portée Performance: en plus de la capacité, inclue les critères de performance des équipements; contrôle la qualité et la propreté du produit et des divers contenants
Fonctionnalité: en plus du fonctionnement de base, on entend les attributs clefs fonctionnels telle que la capacité à maintenir le fonctionnement à l’intérieur des plages critiques d’opération
Construction: neutralité, durabilité, nettoyabilité et stérilisabilité des matériaux de construction des équipements entrant en contact avec le produit
Instrumentation: les outils permettant de suivre le déroulement d’un procédé et d’en évaluer le caractère critique
7. Cadre du procédé Qualité de l’air: classification des salles où sont installés les équipements; de l’air entrant en contact avec le produit ou des surfaces entrant en contact avec le produit
Dessins: plans de l’ensemble des salles incluant l’écoulement des marchandises et des personnes
Services: les besoins instantanés et à long terme
8. Étapes d’un procédé Préparation des réactifs : peut s’agir de nutriments ou d’agents de formulation; peser (classe 100 000); parfois stérilement (classe 100); requiert nettoyage (e.g. endotoxines) et stérilisation des réservoirs et contenants divers
Mélange des réactifs: eau USP ou WFI, classes 100 000 (manipulation non-stérile) à 100 (stérile)
Filtration stérile: idem ci-haut
Préparation des réservoirs: idem ci-haut
Préparation des lignes de transfert: idem ci-haut
Production: classe 100 000 sauf classe 100 si ouvert à l’air libre
Préparation des équipements de récolte: idem ci-haut
Préparation des équipements de purification : idem ci-haut
Lyophilisation: idem ci-haut
Mise en vials: idem ci-haut
9. Cycle de vie : le cadre de la validation
16. Description du bioprocédé
17. Cadre du plan maître de validation
19. Composantes critiques TOUTES!
maintien de la stérilité, pureté et intégrité du produit
maintien de l’aseptie et de l’intégrité des équipements de production, de séparation et de purification
20. Activités de validation
1. Spécifications de design des équipements
2. Les réactifs et cellules utilisées
3. La préparation des équipements
nettoyage, passivation, stérilisation
4. La préparation des réactifs et des cellules
5. Le procédé de production
échantillonnage, conditions contrôlées, récolte
6. Purification
21. Utilités critiques Air de la pièce classifiée
Eau Froide
Eau USP et/ou WFI
Électricité
Réseau informatique
Drain vers Réservoirs de décontamination
Vapeur (grades usine et propre)
Air comprimé et autres gaz
22. …Utilités critiques Information requises pour chaque utilité
Emploi
Source
Température
Pression
Diamètres des tuyaux
Voltage
Ampérage
Validation/acceptation préalable ?
23. 1. Spécifications de design
Neutralité des surfaces, matériaux
Surfaces nettoyables: facteur de rugosité, points morts
Toutes les composantes supportent une stérilisation à la vapeur (121oC et 1 atm)
Maintien de la stérilité
Haute autonomie des composantes: stérilisation sectorielle
Hydrodynamique, transfert de masse et cisaillement adéquats
Capteurs adéquats : pO2, pH, To, P, N
Actuateurs adéquats : pompes, vannes
Système informatisé de collecte des données d’opération: lectures, points de consigne et actions ainsi que l’archivage
etc.
24. 2. Les réactifs et cellules utilisées
Les réactifs
certificats de conformité des fournisseurs
contaminants biologiques et chimiques
preuve de test sur la biocompatibilité
« cell culture tested »
Milieux définit préférables (sans sérums, extraits de levures, etc.)
Les cellules
Banque maîtresse de cellules congelées ou lyophilisées (homogénéité)
documentation de la provenance : historique
documentation sur les conditions et plages de cultures:
pO2, pH, To, P, N, composition du milieu de culture
25. 3. La préparation des équipements
1. Nettoyage
description des équipements
protocoles (procédure et tests)
critères d’acceptation: # de particules/volume
2. Passivation (rendre la surface neutre)
protocoles (procédure et tests) pour SS316
(0,25-1% NaOH, 60oC, 1h; rince; 0,25-1% acide citrique, 60oC, 1h)
3. Test d’étanchéité
protocoles (procédure et tests): généralement par pressurisation de l’unité entière à 5-10 psi sur 4h avec de l ’air ou de l’He
critères d’acceptation: 1-2 psi/h (fuite moléculaire)
27. 3. La préparation des équipements
Stérilisation
protocoles (procédure): généralement par pressurisation de vapeur saturée à 1 atm et 121 oC sur 30 -60 min
protocoles (tests): essais en utilisant le même milieu de culture ou un milieu enrichi et des spores de bactéries résistantes à la chaleur (thermophiles): Bacillus stearothermophillus
critères d’acceptation:
maintien de la pression et de la température sur la période visée
atteinte de la réduction en microorganismes viables visée
Nfinal = 10-3 organisme par cuve (à 10-6)
N/No = e-kd*t où kd = kdo* e-Ea/T
on assumera de perdre une cuvée sur 1000
28. 3. La préparation des équipements
Stérilisation
29. 4. La préparation des réactifs et des cellules
Réactifs
protocoles de préparation:
acceptation des tests internes: contaminants, biocompatibilité
type de mélangeur, qualité de l’eau ajoutée, mode de stérilisation
critères d’acceptation: aspect visuel, pH, précipités, etc.
Cellules
protocoles de mise en culture aseptique et de préparation de l’inoculum:
décongélation/réhydratation, milieu de culture, mode d’expansion
température, pH, etc.
critères d’acceptation:
taux de croissance, morphologie, taux et niveau de productivité, phénotype
30. 4. La préparation des réactifs et des cellules
Cellules
critères d’acceptation:
taux de croissance, morphologie, taux et niveau de productivité, phénotype (ci-bas: exemple de cellules végétales)
31. 5. Le procédé de production
Inoculation
protocoles:
mode de transport des cellules inter-bioréacteurs, ratio d’inoculation
critères d’acceptation: taux de croissance, morphologie, taux et niveau de productivité, phénotype
Échantillonnage des sous-cultures et de l’inoculum
protocoles:
critères d’acceptation: maintien de l’aseptie des sous-cultures, représentativité du bouillon de culture
(ou suspension cellulaire)
32. 5. Le procédé de production
Inoculation
protocoles: mode de transport des cellules inter- bioréacteurs, ratio d’inoculation
33. 5. Le procédé de production : Conditions contrôlées
pO2
protocoles:
mélange des gaz alimentés, stérilisation (filtres), algorithme de commande (PI), actuateurs (contrôleurs de débits massiques, vannes, bombonnes)
critères d’acceptation: maintien de la pO2 à ± 1% du point de consigne, temps de réponse < 20% du temps de réponse du système après perturbation, maintien de l’intégrité du produit et des cellules, impuretés (gaz, particules, vapeur d’eau)
Procédure identique pour le pH (± 0,1), l’agitation (± 2 rpm),
la température (± 1oC), le volume (± 1% de V),
la pression (± 1 psi)
34. 5. Le procédé de production
Échantillonnage du bioréacteur
protocoles:
ordre des manipulations, volumes à prélever (rinçage des lignes et échantillon), fréquence adaptée à la dynamique cellulaire
critères d’acceptation: maintien de l’aseptie du bioréacteur, représentativité du bouillon de culture
Récolte
protocoles: ordre des manipulations, automatisée ou manuelle
critères d’acceptation:
maintien de l’aseptie du bioréacteur, du bouillon et des composantes périphériques, maintien de l’intégrité du produit et des cellules, % de récupération en volume
35. protocoles: ordre des manipulations, volumes à prélever (rinçage des lignes et échantillon), stérilisation
critères d’acceptation: maintien de l’aseptie du bioréacteur, du bouillon et des composantes périphériques, maintien de l’intégrité du produit et des cellules, % de récupération du produit
Généralement en salle classe 100 si le produit est exposé à l’air
36. Chang A, Sofer G, Dusing S. Expediting compliance for clinical biotherapeutics. BioProcess International, Février 2004.
37. Cadre du plan maître de validation
38. Qualification du design FAT (factory acceptance test) et SAT (site acc. test)
Description des besoins de l’utilisateur
Liste exhaustive des composantes du système
Liste des utilités requises
Critères et plage d’acceptation
Ensemble des dessins rédigés
Clauses reliées à l’inspection du système installé
Liste de la documentation critique exigée des fournisseurs
39. Qualification du design Retour sur les Spécifications de design
Neutralité des surfaces, matériaux
Surfaces nettoyables: facteur de rugosité, points morts
Toutes les composantes supportent une stérilisation à la vapeur (121oC et 1 atm)
Maintien de la stérilité
Haute autonomie des composantes: stérilisation sectorielle
Hydrodynamique, transfert de masse et cisaillement adéquats
Capteurs adéquats : pO2, pH, To, P, N
Actuateurs adéquats : pompes, vannes
Système informatisé de collecte des données d’opération: lectures, points de consigne et actions ainsi que l’archivage
etc.
40. Qualification de l’installation Vérification documentée attestant que les fournisseurs ont respecté les spécifications
Vérification et documentation que l’installation respecte les spécifications des fournisseurs
Vérification et documentation que les locaux et les services permettent l’installation tel que spécifié par le client et le(s) fournisseur(s)
Le IQ est exécuté en révisant la documentation critique et en inspectant les composantes physiques du système
41. Qualification de l’installation Retour sur les Spécifications de design
Capteurs installés adéquatement : pO2, pH, To, P, N
Actuateurs installés adéquatement : pompes, vannes, etc.
Système informatisé de collecte des données et d’opération installés adéquatement
42. Documents relatifs à l’IQ Description des systèmes
Critères d’acceptation
Liste des composantes majeures du système
Liste des utilités requises
Liste des instruments critiques
Liste des dessins finaux (‘as-built’) à vérifier
Liste des PON reliées au système
Liste de contrôle pour l’inspection du système installé
Renvoi de la documentation critique
43. Qualification de l’opération Vérifier et documenter que l’unité de production fonctionne en accord avec les spécifications du manufacturier
Vérifier et documenter que l’unité de production fonctionne en accord avec les spécifications liées à la culture de cellules
Chacune des composantes
Chacune des fonctionnalités
Sections Majeures
1. Critères d’acceptation (±oC, ±oC,
2. Tests opérationnels
44. Qualification de l’opération Retour sur les Spécifications de design
L’opération ne nuit pas à la:
Neutralité des surfaces et des matériaux
La nettoyabilité des surfaces
La résistance à une stérilisation à la vapeur (121oC et 1 atm)
Au maintien de la stérilité
L’hydrodynamique, le transfert de masse et le cisaillement spnt adéquats
Les capteurs fonctionnent adéquatement : pO2, pH, To, P, N
Les actuateurs fonctionnent adéquatement : pompes, vannes
Le système informatisé de collecte des données et d’opération fonctionne adéquatement :
Lectures
Contrôle aux points de consigne
pO2 (± 5%), pH (± 0,1), l’agitation (± 2 rpm), la température (± 1oC), le volume (± 1% de V), la pression (± 1 psi)
Actions reproductibles
Archivage
etc.
45. Qualification de la performance Vérifier et documenter que les DQ, IQ, OQ ont été réalisés
La reproductibilité du procédé est démontrée: quantité et qualité
Le PQ est exécuté en révisant la documentation critique décrite aux IQ et OQ
46. Qualification de la performance La reproductibilité du procédé est démontrée: quantité et qualité
47. Critère d’acceptation final
Tous les tests doivent être complétés avec succès
Le résultat attendu pour chaque test doit être indiqué dans le protocole
48. Le procédé est validé
soumission à la FDA/DGPS
début de la production