1 / 33

UYGULAMALI ÇALIŞMA V

UYGULAMALI ÇALIŞMA V. KAN FİZYOLOJİSİ -2. DENEYLER. KAPİLER KAN TOPLAM LÖKOSİT SAYIMI KANDAN YAYMA PREPARAT HAZIRLANMASI: LÖKOSİT ALTGRUP DAĞILIMI (FORMÜLÜ) VENÖZ KAN PIHTILAŞMA VE (ANTİ-)KOAGÜLANLARIN ETKİSİ PIHTILAŞMA ZAMANININ TAYİNİ KANAMA ZAMANININ TAYİNİ (Duke Metodu)

deron
Download Presentation

UYGULAMALI ÇALIŞMA V

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript

  1. UYGULAMALI ÇALIŞMA V KAN FİZYOLOJİSİ -2

  2. DENEYLER KAPİLER KAN • TOPLAM LÖKOSİT SAYIMI • KANDAN YAYMA PREPARAT HAZIRLANMASI: LÖKOSİT ALTGRUP DAĞILIMI (FORMÜLÜ) VENÖZ KAN • PIHTILAŞMA VE (ANTİ-)KOAGÜLANLARIN ETKİSİ • PIHTILAŞMA ZAMANININ TAYİNİ • KANAMA ZAMANININ TAYİNİ (Duke Metodu) • KANDAN FİBRİN ELDESİ

  3. TOPLAM LÖKOSİT SAYIMI Lökosit pipeti: + 11 e kadar ölçekli + Beyaz boncuklu SULANDIRMA KATSAYISI 1: 20 Sayma kamarası • Basamaklar: • Lökosit pipetine 0.5 çizgisine kadar kapiler kan alınır • Lökosit sulandırma eriyiği ile haznenin üst sınırına (11 çizgisi) kadar sulandırılır • Boncuk yardımıyla karıştırılır • Sayma kamarasına karışan kısım eklenerek mikroskopta sayılır

  4. SAYMA KAMARASI 1/10 mm örnek derinliği

  5. TOPLAM LÖKOSİT SAYISI 1 mm3=ml kanda4000-10000 1mm L 1mm SAYILAN DEĞER X (1-4) mm2 X 0,1 mm X 20 X 10 Sayılan alan Yükseklik Sulandırma katsayısı 1 mm3 = 1 mm3 kandaki toplam lökosit sayısı

  6. LÖKOSİT SAYIM ALANI (1 mm2)(10X) 1 mm

  7. LÖKOSİT SAYIM ALANI (2/16)(20X)

  8. 4 LÖKOSİT

  9. DENEYLER KAPİLER KAN • TOPLAM LÖKOSİT SAYIMI • KANDAN YAYMA PREPARAT HAZIRLANMASI: LÖKOSİT ALTGRUP DAĞILIMI (FORMÜLÜ) VENÖZ KAN • PIHTILAŞMA VE (ANTİ-)KOAGÜLANLARIN ETKİSİ • PIHTILAŞMA ZAMANININ TAYİNİ • KANAMA ZAMANININ TAYİNİ (Duke Metodu) • KANDAN FİBRİN ELDESİ

  10. PERİFERİK KANDAN YAYMA PREPARAT HAZIRLAMA İki lam: Birine 1 damla kapiler kan

  11. Periferik Yayma Preparatı Gövde kısmı Kan sürüntüsünün baş kısmı Kuyruk kısmı

  12. YAYMA PREPARATIN DEĞERLENDİRİLMESİ Boyanarak ışık mikroskobunda inceleme ile: Metilen mavisi + Eozin Asidik yapıları boyar Bazik yapıları boyar DNAMajör bazik protein (Örnek) Uygulanan yöntem: Giemsa Boyama • 5 ‘ May-Grünwald (Fiksasyon) Yıka • 10 ’ Giemsa Yıka • Kurut • İmersiyon objektifi (100X) ile imersiyon yağı damlatarak mikroskopta incelenir

  13. PERİFERİK KAN LÖKOSİT ALTGRUP DAĞILIMI (FORMÜLÜ) % oranı Sayısı mm3=ml kanda Nötrofil% 40-75 1600-7500 Eozinofil % 1-6 40-600 Bazofil <% 1 <40-100 Monosit % 2-10 80-1000 Lenfosit% 20-45 800-4500

  14. Normal Periferik Kan Eritrositler Lökositler Trombositler Sayım alanı

  15. Yayma Preparatta Kalın Kısım – İnce Kısım

  16. Eritrositler

  17. Eritrositler

  18. Lökosit Alt Grupları Kırmızı granül Parçalı çekirdek Mor ince granül Parçalı çekirdek Granül yok Parçasız çekirdek Mor granül Parçalı çekirdek Granül yok Çentikli çekirdek

  19. Çomak ve Parçalı Nötrofil İnce mor granüllü

  20. 1 Lenfosit ve 1 Parçalı Nötrofil Yoğun yuvarlak tek çekirdek Dar sitoplazma

  21. Monosit • Granül seçilmiyor • Çentikli geniş çekirdek • Geniş sitoplazma

  22. Bazofil • Mor iri granüllü • Parçalı çekirdekli

  23. Trombositler • Küçük parçacık görünümünde • Çekirdekli hücrelerin çekirdeklerine • yakın renkte • Kümeler halinde • Her alanda 1-2 adet

  24. WEB SİTESİNDE GÖRÜLECEK GÖRÜNTÜLER

  25. Analizatör Cihazlarla Lökosit Sayımı Sonucu Toplam lökosit sayısı 10^3=103, yani 1000 Lökosit sayısını söylerken binli sayılar olarak söylüyoruz Lökositleri % olarak verir L= Litrenin milyonda biri, yani mm3 karşılığı # (sayı) olarak da altgrupları verir

  26. Analizatör Cihazlarda Lökosit Sitogramı Hücre büyüklüğü Her bir hücrenin büyüklüğünü ve granül içeriğini inceler ve iki boyutlu bir grafik olarak gösterir. Lökosit altgrupları bu ölçümlere göre değerlendirilir. Şüpheli durumlarda bu değerler periferik yayma preparatı ile doğrulanır. Granülarite

  27. Analizatör Cihazlarda Lökosit Sitogramı Büyük ve granüllü hücreler: Nötrofiller Granülsüz ve küçük hücreler: Lenfositler Hücre artıkları

  28. DENEYLER KAPİLER KAN TOPLAM LÖKOSİT SAYIMI KANDAN YAYMA PREPARAT HAZIRLANMASI: LÖKOSİT ALTGRUP DAĞILIMI (FORMÜLÜ) VENÖZ KAN PIHTILAŞMA VE (ANTİ-)KOAGÜLANLARIN ETKİSİ PIHTILAŞMA ZAMANININ TAYİNİ KANAMA ZAMANININ TAYİNİ (Duke Metodu) KANDAN FİBRİN ELDESİ

  29. PIHTILAŞMA VE (ANTİ-)KOAGÜLANLARIN ETKİSİ Tüplere maddeler (0,2 ml) konulur ve kan (1 ml) eklenir: • + Kan • Sodyum (Na)-sitrat + Kan • Sodyum (Na)-sitrat + Kan + Kalsiyum (Ca) klorür • Heparin + Kan • + Kan + Kalsiyum (Ca) klorür • Pıhtılaşma gözlenerek değerlendirilir. • Yalnız kan olan tüpe göre farklar gözlenir.

  30. KOAGÜLASYON REAKSİYONU (KASKADI) PIHTILAŞMA ZAMANI (GENEL TEST) HMWK Kallikrein İntrensek yol Doku faktörü Ekstrensek yol XII XI IX VIII PZ aPTZ VII Aktive parsiyel tromboplastin zamanı Protrombin zamanı V+X Trombin Fibrinojen Fibrin

  31. KANAMA ZAMANININ TAYİNİ • Duke Metodu (Normal değeri: 1 – 3 ’) • Parmak ucundan lanset kesisi ile uygulanır. • Düzenli aralıkla (10 “) filtre kağıdı ile kan uzaklaştırılarak kanamanın durma süresi saptanır.

  32. KANDAN FİBRİN ELDESİ Venöz kan örneği porselen yüzeyde “pıhtılaştırılırken” oluşan fibrin yapısı lifler halinde süpürge çöpünde gözlenir!! Fibrinin beyaz, şeffaf yapısı ve arasında sıkışan eritrositler ve pıhtı yorumlanır.

  33. SARI FİBRİN LİFLERİ

More Related