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PCR 扩增产物的分析

PCR 扩增产物的分析. Gel electrophoresis Restriction endonuclease Molecular hybridization Nucleic acid sequence. PCR 扩增产物的电泳分析. 琼脂糖凝胶电泳 常用于临床检测（定性） 聚丙烯酰胺凝胶电泳 分离效果比琼脂糖好，条带比较集中 可用于科研及检测分析. 琼脂糖凝胶电泳. 琼脂糖凝胶电泳是一种非常简便、快速、最常用的分离纯化和鉴定核酸的方法 琼脂糖是从海藻中提取的一种线状高聚物 根据琼溶解温度，把琼脂糖分为一般琼脂糖和低熔点琼脂糖

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PCR 扩增产物的分析

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Presentation Transcript

  1. PCR 扩增产物的分析 • Gel electrophoresis • Restriction endonuclease • Molecular hybridization • Nucleic acid sequence

  2. PCR扩增产物的电泳分析 琼脂糖凝胶电泳 常用于临床检测（定性） 聚丙烯酰胺凝胶电泳 分离效果比琼脂糖好，条带比较集中 可用于科研及检测分析

  3. 琼脂糖凝胶电泳 • 琼脂糖凝胶电泳是一种非常简便、快速、最常用的分离纯化和鉴定核酸的方法 • 琼脂糖是从海藻中提取的一种线状高聚物 • 根据琼溶解温度，把琼脂糖分为一般琼脂糖和低熔点琼脂糖 • 低熔点琼脂糖熔点为62～65℃，溶解后在37℃下维持液体状态约数小时，主要用于DNA片段的回收，质粒与外源性DNA的快速连接等

  4. 凝胶浓度选择 琼脂糖凝胶的浓度与DNA分离范围

  5. 电泳缓冲液 • 常用三种缓冲液 • Tris-硼酸（TBE） • Tris-乙酸（TAE） • Tris-磷酸（TPE） • TBE与TPE：缓冲容量高，DNA分离效果好，但TPE在DNA片段回收时含磷酸盐浓度高，容易使DNA沉淀 • TAE：缓冲容量低，但价格较便宜，因而推荐选用TAE。缓冲液中的 EDTA 可螯合二价阳离子，从而抑制DNA酶的活性，防止PCR扩增产物降解

  6. 10×TBE缓冲液的配制 • 配方 • Tris 108克 • EDTA 9.3克 • 硼酸 55克 • H2O至 1000ml • pH应为8.0～8.2 • 临用时用水稀至0.5×TBE（20倍稀释）

  7. 核酸电泳的指示剂 • 指示剂： • 溴酚兰 • 二甲苯青 • 溴酚兰：在碱性液体中呈紫兰色 • 电泳中，溴酚兰的迁移率与双链线性DNA片段

  8. 核酸电泳的指示剂 • 二甲苯青：水溶液呈兰色， • 电泳时，其迁移速率与双链线性DNA大致相当

  9. 载样缓冲液 • 指示剂一般与蔗糖、甘油或聚蔗糖400组成载样缓冲液 • 作用： • ①增加样品密度，使其比重增加，以确保DNA均匀沉入加样孔内 • ②在电泳中形成肉眼可见的指示带，可预测核酸电泳的速度和位置 • ③使样品呈色，使加样操作更方便

  10. 核酸电泳的染色剂 • 最常用的染色剂 • 溴化乙锭 • 银染色

  11. 核酸电泳的染色剂 • 溴化乙锭（ethidium bromide，EB） • 是一种荧光染料，EB分子可嵌入核酸双链的碱基对之间，在紫外线激发下，发出红色荧光 • 可在凝胶电泳液中加入终浓度为0.5ug/ml的EB，有时亦可在电泳后，将凝胶浸入该浓度的溶液中染色10～15min • 琼脂糖凝胶EB染色，肉眼可见核酸电泳带，其DNA量一般>5ng • 溴化乙锭太多，凝胶染色过深，核酸电泳带看不清时，可将凝胶放入蒸馏水浸泡30min后再观察

  12. 核酸电泳的染色剂 • 银染色：银染色液中的银离子(Ag+)可与核酸形成稳定的复合物，然后用还原剂如甲醛使Ag+还原成银颗粒，可把核酸电泳带染色黑褐色 • 主要用于聚丙烯酰胺凝胶电泳染色，也用于琼脂糖凝胶染色 • 灵敏度比EB高200倍，但银染色后，DNA不宜回收

  13. 电泳 • 电泳装置 • 电泳仪 • 电泳槽 • 灌胶模具等

  14. 电泳仪 • 普通电泳仪 • 高压电泳仪

  15. 电泳槽 • 水平平板 • 垂直平板

  16. 电泳方法 • 用蒸馏水将电泳槽和梳子冲洗干净，放在水平桌面上，并架好梳子 • 根据核酸分子量的大小配制不同浓度的琼脂糖凝胶，一般 200～400 bp 的DNA片段（可配制1.2～1.7%）

  17. 电泳方法配制琼脂糖凝胶及倒胶 • 0.5×TBE电泳缓冲液100ml于三角烧瓶中，称取一定量的琼脂糖粉放入后沸水锅或微波炉内加热熔化，冷却至60℃(需要时可加入EB)，倒入电泳槽中，待凝固 • 向电泳槽中倒入0.5 × TBE，其量以没过胶面2mm为宜，小心移去梳子（如样品孔内有气泡，应除去）

  18. 电泳方法上样与通电 • 在DNA样品中加入0.2体积的载样缓冲液，混匀后，加入样品孔内 • 接通电源，一般红色为正极黑色为负极，切记DNA样品由负极往正极泳动（靠近加样孔的一端为负），电压为1 — 5V/cm（长度以两个电极之间的距离计算） • 根据指示剂泳动的位置，判断是否终止电泳，一般 200～400bp 的PCR产物50V电压，电泳20～40min

  19. 电泳方法结果观察 • 紫外仪上观察电泳带及其位置 • 并与核酸分子量标准比较被扩增产物的大小

  20. 聚丙烯酰胺凝胶电泳 • 适宜分离鉴定低分子量蛋白质、小于1Kb的DNA片段和DNA序列分析 • 其装载的样品量大，回收DNA纯度高，长度仅相差0.2%（即500bp中的1bp）的核苷酸分子即能分离

  21. 聚丙烯酰胺凝胶 • 由丙烯酰胺单体，在催化剂TEMED（N，N，N，N‘一四甲基乙二胺）和过硫酸铵的作用下，丙烯酰胺聚合形成长链，聚丙烯酰胺链在交联剂，N，N'一亚甲双丙烯酰胺参与下，聚丙烯胺链与链之间交叉联接而形成凝胶 • 聚丙烯酰胺凝胶孔径的大小是由丙烯酰胺的浓度决定的

  22. 不同浓度丙烯酰胺和DNA有效分离范围

  23. 材料 • 电泳仪器： • 电泳仪 • 垂直电泳槽及其附件. • 30%丙烯酰胺 • 丙烯酰胺，29克 • N，N‘一亚甲基双丙烯酰胺，1克 • H2O，加至100ml装于棕色瓶内，4℃可保存二个月

  24. 材料 • 10%过硫酸铵 • 过硫酰铵，1克，加水至 10 ml4℃可保存一周，-20℃可保存一个月 • 1×TBE电泳缓冲液 • TEMED（四甲基乙烯基二胺）

  25. 聚丙烯酰胺凝胶的制备与电泳 • 配胶：根据分离DNA片段的大小及需凝胶的容积，配制聚丙烯酰胺凝胶 • 按要求装配好垂直电泳板，两块玻璃板的两侧及底部用1%的琼脂糖封边，防止封闭不严而使聚丙烯酰胺液漏出 • 将装好的玻璃电泳板倾斜成45～60℃角 • 按表3配制所需%浓度凝胶的毫升数 • 加入TEMED后，立即混匀，缓缓倒入两玻璃板间的胶床中，直到液体接近溢出时为止

  26. 聚丙烯酰胺凝胶的制备与电泳 • 立即插入适当的梳子，密切注意防止梳齿下产生气泡，用一有力的夹将梳子夹在一边的玻璃板上，然后将玻璃板斜靠在物体上，使成10°角，可减少液体泄漏的机会 • 室温聚合一小时后，将玻璃板插入电泳槽中，上紧，倒入0.1×TBE缓冲液

  27. 聚丙烯酰胺凝胶的制备与电泳 • 小心取出梳子，立即用缓冲液冲洗加样孔，因为梳子取出后，梳子上吸附的及凝胶顶部未聚合的丙烯酰胺会流入加样孔内聚合，产生不规则的表面，将导致以后DNA电泳带型不规则 • 将DNA样品与适量的载样缓冲液混匀后，加到样品孔内，加样时不要产生气泡

  28. 聚丙烯酰胺凝胶的制备与电泳 • 接好电极，电压为1-8V/cm，进行电泳 • 电泳毕，切断电源，取出胶床板，小心移去一块玻璃板，让凝胶吸附在另一块玻璃板上，浸入含0.5ug/ml的溴化乙锭溶液中，15～30min后取出水洗，紫外仪下观察结果 • 聚丙烯酰胺凝胶电泳只能检出>10ng以上量的DNA条带（要求更高的灵敏度，可用银染）

  29. 电泳结果分析 • DNA Marker • λ DNA • 人工片段 • 100 bp ladder

  30. 酶切分析 • 根据PCR产物中限制性内切酶的位点，用相应的酶进行酶切 • 酶切产物电泳分离后，获得符合理论的片段 • 此法既能进行产物的鉴定，又能对靶基因分型，还能进行变异性研究

  31. 分子杂交 • 检测PCR产物特异性的有力证据 • 检测PCR 产物碱基突变的有效方法 • 主要的杂交 • Southern印迹杂交 • 斑点杂交

  32. Southern印迹杂交： • 在两引物之间另合成一条寡核苷酸链并作标记（探针） • 与 PCR 产物杂交 • 此法既可作特异性鉴定，又可以提高检测 PCR产物的灵敏度，还可知其分子量及条带形状，主要用于科研。

  33. 斑点杂交： • 将PCR 产物点在硝酸纤维素膜或尼龙膜薄膜上 • 寡核苷酸探针杂交 • 观察有无着色斑点 • 主要用于 PCR产物特异性鉴定及变异分析

  34. RDB检测 -地中海贫血突变基因 -29（AG） -28（ AG） 17（ AT，AAG  TAG） βE （CD26 GAG  AAG） IVS-I-1（ GT） IVS-I-5（ GC） 27-28（+C） 41-42（-CTTT） 43（ GT） 71-72（+A或+T） 654（ CT）

  35. 微孔板夹心杂交法 • 通过一固定于微孔板的捕获探针与PCR产物的某一区域特异性杂交，使PCR产物间接地固定于微孔板上，然后，再用一生物素等非放射性标记物标记的检测探针与产物的另一区域特异性杂交，漂洗后显色即可判断结果 • 该法使用了两个杂交过程来检测一个产物，其特异性较一次杂交的检测法高

  36. Principle ：NOS（1×1014/cm2） N-羟化琥珀酰亚胺酯

  37. Principle Capture Probe: --CCCCCC ：NH2 Detection Probe: ：Biotin

  38. Principle

  39. Principle Avidin-HRP 显色系统 ：NH2标记的探针 ：Biotin标记的探针 ：NOS基团

  40. 微孔板夹心杂交法——方法学评价 • 敏感度：该法检测HBV，敏感度达5个HBV DNA分子 • 敏感性和特异性与 PCR 32P 探针的Southern杂交法相当 • PCR微孔板夹心杂交法：操作简便、快速、避免了同位素标记探针的危害，显色反应类似于临床常规应用的ELISA

  41. 微孔板直接杂交 • 不是采用夹心法，而是直接将特异的探针固定于微孔板上，然后用生物素标记的PCR产物与之杂交 • 只进行一次杂交，方法简单，但特异性不高

  42. 微孔板杂交的基本过程 • DNA的固定 • 探针的杂交 • 酶联显色

  43. DNA的固定 • 在一定盐浓度条件下，DNA单链的一端可固定在微孔板上 • 不同来源的微孔板固定DNA时所需盐浓度不同。因此，必须用一系列的盐浓度（0.15—3.0mol/L NaCl）来固定加热变性的核酸，然后，用固定浓度的标记探针杂交。显色后，判断合适的固定盐浓度

  44. DNA的固定 • 固定方法的选择必须使DNA最大量的固定，且不影响杂交 • 用合适浓度的 NaCl 或（NH4）2SO4 可达到此目的。硫氰酸钠则无固定作用。 • 盐浓度合适时，DNA应为一端固定到微孔板上，而太低或太高浓度的盐可能使DNA “平躺”固定在孔内而影响杂交

  45. DNA的固定 • Mg2+虽有促进DNA固定的作用，但它可激活Dnase，所以，一般不用 • 被固定的DNA应大于300bp，否则影响杂交结果。每孔可固定高达 200ng（624bp）的DNA • 盐浓度和固定量确定后，按下法固定DNA

  46. DNA的固定 • 待固定DNA 100℃加热 5min 变性，并立即冷却，与合适的固定液混合后，加入微孔板的孔内 • 固定液：10mmol/L磷酸钠-10mmol/L EDTA，pH7.0，合适浓度的NaCl（与DNA变性混合后，终浓度为最适固定浓度） • 用胶布封好，浸于37℃水浴2h • 用PBS-0.05%Tween20 漂洗3次立即用于杂交，或封闭于塑料袋内保存

  47. 杂交与显色 • 杂交 • 可采用标准的杂交系统杂交 • 夹心杂交时，是将变性的PCR产物与检测探针一并加入 • 杂交与漂洗时间均较一般膜杂交短 • 显色 • 根据不同酶标，检测分子的不同来选择不同的底物、终止剂和测定波长

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