全内反射荧光显微镜

1. 全内反射荧光显微镜 医学实验05级 张园 郑雪飞 宋一萌 解依荻

2. 发展与展望 优势应用 分型及结构 基本原理 发展历史

3. 发展历史 荧光显微镜的概念 全内反射荧光显微术的发展历程

4. 发展历史 荧光显微镜的概念 细胞中有些物质，如叶绿素等，受紫外线照射后可发荧光；另有一些物质本身虽不能发荧光，但如果用荧光染料或荧光抗体染色后，经紫外线照射亦可发荧光，荧光显微镜就是对这类物质进行定性和定量研究的工具之一。

5. 发展历史 全内反射荧光显微术的发展历程 在细胞生物学方面，传统光学显微镜始终不能解决生物样本显微中的几个重要问题： 1.显微图像的信噪比不高； 2.光源对生物样本照射的损伤； 3.光学衍射所致的分辨极限（R ≥0. 61λ/nsinθ）： 传统的光学显微镜由于受到光瞳远场衍射效应的影响,存在分辨极限,瑞利将之归纳为R ≥0. 61λ/nsin(u/2) ,其中R为分辨力,λ为成像光波波长, nsin(u/2)为物透镜的数值孔径,即NA 值，u为孔径角,因此光学显微镜空间分辨极限～250 nm。

6. 全内反射荧光显微术的发展历程 近年来人们开发出了一系列光学显微镜。其中，全内反射荧光显微术(Total internal reflection fluorescence microscopy ,TIRFM)是近年来新兴的一种光学成像技术。

7. 肌球蛋白酶活性测量，肌收缩力的产生， 荧光标记驱动蛋白动态研究。 1995年 Yanagida小组用TIRFM技术首次在液体溶液中得到了荧光标记的单个蛋白质分子的成像。 80年代早期 90年代 Axelrod等生物物理 学家对TRIFM技术 及基本原理进行描 述，并探索了其生 物应用。 20世纪 20世纪 Hirsch field 完成了 第一个 全内反射 荧光实验 1965年 1996年 Moerner小组又用这项技术实现了限制在丙烯酰胺胶体的纳米孔中的单分子的三维成像。 新型物镜透镜、聚光镜和超灵敏探测器的出现，使TRIFM技术得到充分发展。 该项技术已经应用到许多单分子的研究中 至今 这是首次尝试用全内反射荧光法测液体中的单个分子的荧光。将全反射理论与生物细胞的荧光成像技术相结合是一种全新的突破。

8. 基本原理 全内反射荧光显微镜 的基本设计思路 全内反射荧光显微镜 的基本原理

9. 基本原理 全内反射荧光显微镜 的基本原理 荧光捕捉原理 全内反射荧光显微镜 的基本设计思路 荧光激发原理 全内反射荧光显微术是利用全内反射产生的消逝波激发样品,从而使样品表面数百纳米厚的薄层内的荧光团受到激发,荧光成像的信噪比大大提高。可以看到样品表面，单分子的活动情况。这种方法的成像装置简单，极易和其它成像技术、探测技术相结合，目前已成功的实现100nm甚至更低的空间分辨率。

10. 荧光激发原理 全 内 反 射 snell定律: n1sin θ1=n2 sin θ2 当n1大于n2时，全反射就可能发生: θ2=90° θc=sin-1(n2/n1) 即所有的入射光线全部反射出来,称为全内反射

11. 荧光激发原理 隐 失 波 非均匀波 沿着入射面上的介质边界传播 在平行界面方向以平行波场方式传播 在垂直界面方向则是呈指数衰减。 隐失波的强度-深度图

12. 荧光激发原理 隐 失 波 T12（θi）- 分界面处的透射强度 θi - 入射角 d 12 - 渗透深度 λ - 入射光波长 对于可见光波长380 ～ 780nm而言，浸透深度为～100nm。 透射强度和浸透深度公式

13. 荧光捕捉原理 箭头表示激光的方向，激光被全反射，同时产生在z方向成指数衰减的隐失波。 黄色小圆点表示被隐失波激发的荧光分子， 白色小圆点表示未被激发的荧光分子。

14. 荧光捕捉原理 当对活细胞成像时,为了达到单分子级的灵敏度或是为了减少曝光时间,需要采用图像增强器。 CCD相机的快速成像特点提高了其时间分辨率，使得观察单分子的运动、细胞物质的分泌、蛋白质的相互作用成为可能并成为这方面的优势观察仪器。 CCD相机 目前使用CCD 探测,可达到的量子产率已到～80 % ,成像速率～200 Hz. CCD相机的高灵敏度特点使全内反射荧光显微镜利用消逝波照射样品并使其成像成为可能，也成就了其高信噪比。

15. 全内反射显微镜的分型及其结构 • 全内反射荧光显微镜根据其成像系统的不同可分为棱镜型和物镜型两种类型 两种类型的全内反射荧光显微镜成像系统，1）为棱镜型，2）为物镜型。

16. （一）棱镜型全内反射荧光显微镜 • 利用激光经过棱镜并产生全内反射，其消逝波照射已被荧光标记的生物样品，其激发光从另一侧进入物镜并被CCD相机捕捉。

18. 棱镜型全内反射荧光显微镜光路示意图

19. 评价 棱镜型系统在实现上更加容易，它只需要激光 光源、棱镜和显微镜。 在探测上，它也不容易受到入射光信号的干扰。 放置样品的空间受到棱镜的限制。

20. （二）物镜型全内反射显微镜 收集样品荧光信号的接收器 显微镜的物镜 发生全内反射的光学器件。

22. 由于细胞的典型折射率为1. 33～1. 38 ,因此要想实现全内反射,物镜的NA 必须大于1. 38 。表达式为： • NA = nsin（u/2） • nsin（u/2） > nsinθc • NA 为物镜的数值孔径, n ,u分别为物镜的折射率(浸没油) 和孔径角。θc 为发生全反射的临界角。

24. 二者比较

25. 棱镜型全内反射荧光显微镜

26. 物镜型全内反射荧光显微镜

27. 全内反射 荧光显微镜 之应用 05级医学实验 宋一萌 90513111

28. 全内反射荧光显微技术利用全内反射产生的消逝波激发样品，由于消逝波强度成指数衰减，使激发区域限定在样品表面的一薄层范围内，因此具有其它光学成像技术无法比拟的高信噪比。全内反射荧光显微技术利用全内反射产生的消逝波激发样品，由于消逝波强度成指数衰减，使激发区域限定在样品表面的一薄层范围内，因此具有其它光学成像技术无法比拟的高信噪比。 • 当今世界上研究单分子科学最具前途的新型生物光学显微技术之一 • 可用来实现对单个荧光分子的直接探测。

29. 全内反射荧光显微镜里用消逝波作为样品的激发光源，并用有着高灵敏度和高时间分辨率的CCD相机(成像速率200Hz)捕捉样品荧光，因此具有如下优点：全内反射荧光显微镜里用消逝波作为样品的激发光源，并用有着高灵敏度和高时间分辨率的CCD相机(成像速率200Hz)捕捉样品荧光，因此具有如下优点：

30. 1：信噪比高（相对共聚焦显微镜） • 2：分辨率高（相对其他的光学显微镜） • 3：对生物样本损伤小（相对电镜）可以进行活体物质的研究和单分子的动态研究。

31. 全内反射荧光显微术正是凭借其独特的优势(它的荧光激发深度只在～100 nm 的薄层范围内),从而成为研究细胞表面科学如生物化学动力学、单分子动力学的最有前途的光学成像技术。 • 全内反射荧光显微成像法不再采用扫描成像,大大提高了成像速度,可以满足实时成像的要求;另一方面它的图像解释相对于近场,干涉显微成像来说也较简单。

32. 现在全内反射荧光显微术已被广泛用于 • 实时观察单个肌浆球蛋白分子的运动 • 单个蛋白分子对之间的荧光共振能量转移( FRET) • ATP 酶的翻转 • 聚合物内单个分子的结构变化 • 生物质膜附近的神经分泌腺的颗粒运动

33. 全内反射荧光显微术的发展一方面会在加强传统优势的基础上，即动态观察生物大分子的结构、相互作用、物质的分泌，同时在不断的改进物镜和CCD相机的性能基础上进一步同其他仪器的结合，更多的用在生物细胞活体方面的研究。

34. 全内反射荧光显微术在生物单分子科学中的应用

35. 单分子荧光探测主要有三个问题： • （1）单分子发出的荧光信号通常是很微弱的，所以要寻找一个足够灵敏的探测器。 • （2）由于拉曼散射，瑞利散射和杂质荧光等产生的背景光，极大的干扰了信号光的探测。所以应该尽量降低背景激发光。 • （3）本体溶液产生的焦点荧光之外的背景光。 这些问题都可以利用全内反射荧光显微成像系统来解决

36. 全内反射荧光显微镜可以直接对细胞表面的过程进行观测，而不受到来自细胞内深层区域信号的干扰。全内反射荧光显微镜可以直接对细胞表面的过程进行观测，而不受到来自细胞内深层区域信号的干扰。 全内反射荧光显微术是研究细胞表面科学如生物化学动力学、单分子动力学的最有前途的光学成像技术

37. 利用物镜型全内反射荧光显微镜观察活细胞表面示意图。

38. 单个的生物大分子的荧光分子特征和动态构像变化要运用到棱镜型的全内反射荧光显微术。单个的生物大分子的荧光分子特征和动态构像变化要运用到棱镜型的全内反射荧光显微术。 • 如用环境敏感荧光基团标记的肌球蛋白，然后用分光镜检测。肌球蛋白分子上荧光基团发出的荧光光谱随着时间的起伏现象，说明了自发的肌球蛋白单分子构像改变。

39. 2.蛋白分子相互作用 • 通过荧光标记的分子共同定位运用全内反射荧光显微镜对分子间相互作用可以直接观察，荧光共聚焦能量转移也能够检测到。 • 分子伴侣蛋白GroEL和伴侣辅助分子(co-chaperon)GroES或者其底物乳球蛋白的相互作用已经在单分子水平进行了很好的研究。 • 单配对荧光共聚焦也可以用在单分子水平生物大分子相互作用的成像。

40. 3.离子通道研究 • 离子通道通过负责神经，肌肉兴奋性细胞的质膜调节离子电流和电化学势。 • 单分子水平通道电流记录可以通过使用膜片钳方法来检测各种通道的电特性。 • 目前，已经发展了一种同时可以测电流和荧光信号的实验系统。荧光标记的离子通道蛋白包埋到平面脂双层中，然后用物镜型全内反射荧光显微镜观察。利用全内反射荧光显微镜结合后来发展的荧光共振能量转移或者双视角的光镜可以看到离子通道与其配基或者调节子之间的相互作用，同时可以在体内跟踪构像变化与离子电流。

41. 4.吸附 • 用于DNA大分子在液-液、固-液界面的单分子吸附行为 。

42. 全内反射荧光显微镜下拍到的位于表面的Actin-YFP和Tubulin-YFP蛋白分子图全内反射荧光显微镜下拍到的位于表面的Actin-YFP和Tubulin-YFP蛋白分子图

43. 分别在全内反射荧光显微镜下（左）和一般荧光显微镜（右）拍到的Dil-stainedneuron,细胞。分别在全内反射荧光显微镜下（左）和一般荧光显微镜（右）拍到的Dil-stainedneuron,细胞。

44. 全内反射荧光显微镜（TIRFM）是研究紧贴固体平面支撑物的细胞膜的技术，但是正因为膜与固体支撑物具有相互作用，以及消逝波强度的指数性下降而导致单分子信号的指数性下降，使得对结果的解释具有一定的困难性。全内反射荧光显微镜（TIRFM）是研究紧贴固体平面支撑物的细胞膜的技术，但是正因为膜与固体支撑物具有相互作用，以及消逝波强度的指数性下降而导致单分子信号的指数性下降，使得对结果的解释具有一定的困难性。 • 因此将全内反射荧光显微术与其它的显微成像技术相结合来研究将是未来发展的一个新的方向。

45. The application of the total internal reflection fluorescence microscopy 展望全内荧光显微镜的前景 解依荻

46. 全内反射应用的核心问题 • 全内反射应用的核心问题是制作与电子显微术（EM）切片尺寸相当的光学切片。

47. 共焦技术 VS.全内反射技术 • 共焦技术：单光子或双光子的共焦系统层析深度分别为～500－800nm。 • 全内反射显微术: 典型的垂直照明深度<100nm。 • 结论：薄的光学层析层切片信噪比强； 细胞的光损伤和光漂白影响也很小。

48. 全内反射的应用 • 在生物单分子研究中的应用 • 直接观察细胞表面的生命活动,而不受细胞深层区域信号的干扰. • 全内反射荧光显微术的荧光激发深度只在～200ｎｍ的薄层范围内,从而成为研究细胞表面科学如生物化学动力学、单分子动力学的最有前途的光学成像技术。

49. 全内反射的应用比较 • 与其他生物单分子研究技术的比较 全内反射荧光显微镜（TIRFM） 共聚焦激光扫描显微镜（CLSM） 双光子激光扫描显微镜（TPLSM）

50. 全内反射的应用比较 • 全内反射荧光显微镜（TIRFM） • 全内角反射荧光显微镜（total internal reflection fluorescence microscope，TIRFM），利用光线全反射后在介质另一面产生衰逝波的特性，激发荧光分子以观察荧光标定样品的极薄区域，观测的动态范围通常在200 nm以下。因为激发光呈指数衰减的特性，只有极靠近全反射面的样本区域会产生荧光反射，大大降低了背景光噪声干扰观测标的，故此项技术广泛应用于细胞表面物质的动态观察。