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人体与动物生理学实验. EXPERIMENT OF HUMAN AND ANIMAL PHYSIOLOGY. 生命科学学院. 目录 INDEX. EXP1. 动物生理实验基本技术 EXP2. 血红蛋白( Hb )的测定 EXP3. 小肠吸收和渗透功能的测定 EXP4. 蛙类心搏过程的观察和描记 EXP5. 蛙类心室的期前收缩和代偿性间歇 EXP6. 蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本的制备 EXP7. 蟾蜍坐骨神经刺激强度、频率与肌肉收缩的关 系 EXP8. 蟾蜍坐骨神经神经干动作电位及其传导速度测定 EXP9. 蟾蜍坐骨神经神经干传导速度测定 EXP10. 胰岛素惊厥.
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人体与动物生理学实验 EXPERIMENT OF HUMAN AND ANIMAL PHYSIOLOGY 生命科学学院
目录 INDEX • EXP1.动物生理实验基本技术 • EXP2.血红蛋白(Hb)的测定 • EXP3.小肠吸收和渗透功能的测定 • EXP4.蛙类心搏过程的观察和描记 • EXP5.蛙类心室的期前收缩和代偿性间歇 • EXP6.蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本的制备 • EXP7.蟾蜍坐骨神经刺激强度、频率与肌肉收缩的关系 • EXP8.蟾蜍坐骨神经神经干动作电位及其传导速度测定 • EXP9.蟾蜍坐骨神经神经干传导速度测定 • EXP10.胰岛素惊厥
实验一 动物生理实验基本技术 【实验目的】 熟悉动物生理学的基本实验技术。 【实验内容】 1、手术刀、手术剪和止血钳等基本手术器械的使用方法。 2、打结等手术的基本操作技术。 3、动物麻醉、固定、暴露器官及采血等基本生理实验技术。 4、生物信号系统的使用方法。 实验目的 实验内容
1. 手术器械及用法 • 刀:姿势有指压式、执笔式及挑式等 实验目的 实验内容
1. 手术器械及用法 • 剪:外壳剪、眼科剪、毛剪、骨剪、普通剪。 实验目的 实验内容
手术器械及用法 • 镊:用于剥离、剪断和缝合,眼科镊、外科镊。 实验目的 实验内容
1. 手术器械及用法 • 钳:止血钳、持针钳 实验目的 实验内容
1. 手术器械及用法 • 注射器:玻璃注射器、塑料注射器 实验目的 实验内容
1. 手术器械及用法 • 注射器:玻璃注射器、塑料注射器 实验目的 实验内容
2. 打结等手术的基本操作技术 • 结的种类:方结(平结),三叠结(加强结),外科结, • 假结(斜结) 实验目的 实验内容
3.动物固定、麻醉等实验技术 • 徒手保定 • (用于家兔麻醉时的保定) • 手术台保定 保 定 实验目的 实验内容
3.动物固定、麻醉等实验技术 • 部位 从耳外缘静脉注射 • 药物2%戊巴比妥钠 • 剂量1ml/kg 体重 • 麻醉判断 当动物四肢松软、 • 呼吸变慢、瞳孔缩小、角膜反 • 射迟钝、痛觉消失时,表明已麻醉 麻 醉 实验目的 实验内容
4. RM6240C信号采集处理系统的使用 1)系统组成 系统由硬件和软件两部分组成。硬件包括外置程控放大器、数据采集板、数据线及各种信号输入输出线。软件(V1.02)主要由RM6240.ExE及多个实验子模块组成。软件与硬件协调工作,实现系统的多种功能。其面板上设置有外接信号输入插座、刺激器输出插座、记滴及监听插座。 实验目的 实验内容
RM6240C信号采集处理系统的使用 实验目的 RM6240C前后面板 实验内容
RM6240C信号采集处理系统的使用 2)系统运行 打开外置的“生理实验系统”电源(若仅对以前记录的波形进行分析,不作示波及记录,则可不开外置仪器),然后开启计算机,用鼠标双击计算机屏幕上的 实验目的 实验内容
3)系统功能 (l)刺激器(图)对话框中的参数设置必须通过每一参数项右边的上下箭头调节,直接通过键盘输入无效。如果仅通过鼠标点击方向箭头,则数字以 0.1为单位变化;如果点击鼠标的同时,按仕SHIFT功能键,则数字以l为单位变化;按住Ctrl功能键,则数字以10为中位变化。 实验目的 实验内容 刺激器对话框
(2)监听功能只供第一通道使用,可用于减压神经放电、膈神经放电、肌棱放电等实验。使用时将电脑的有源音箱与仪器的监听插孔接通即可。(2)监听功能只供第一通道使用,可用于减压神经放电、膈神经放电、肌棱放电等实验。使用时将电脑的有源音箱与仪器的监听插孔接通即可。 (3)记滴功能在示波菜单中,选择记滴功能,弹出如下对话框。选择“开始记滴”按钮,在“开始时刻”对话框中系统自动记录这一时刻,并在“速率”框中自动显示当前尿滴的速率。此时“开始记滴”按钮变为“停止记滴”,在您需要的时候,按“停止记滴”按钮。系统自动显示记滴时间、滴数和平均速率。如果您需要记录波形、请先“开始记录”,再“开始记滴”。 实验目的 实验内容 记滴功能对话框
【注意事项】 1. 任何实验,只要生物信号无问题,要取得好的实验效果,关键是实验参数(用系统界面右边控制参数区的按键调节)的设置,实际上取决于选择合适的“采集频 率”“通道模式”“扫描速度”“灵敏度”“时间常数”“滤波频率”。 2. 注意开机顺序应先开外置仪器,然后再进入“实验系统”,如果末开外置仪器即进入“实验系统”,系统无法进行“示波”或“记录”,此时应退出软件系统,开启外置仪器后再进入系统,对有些笔记本电脑,则需重新启动计算机。 实验目的 实验内容 注意事项 思考题
实验二 血红蛋白(Hb)的测定 • 【实验目的】 • 掌握测定血红蛋白含量的基本方法—比色法。 • 【实验原理】 • 测定血红蛋白含量的方法很多,实验常用比色法。其原理是在一定量的血液中,血红蛋白经少量盐酸的作用,使亚铁血红素变成高铁血红素,呈现较稳定的棕色。用水稀释后与标准色比较,求出每100 ml血液中所含的血红蛋白克数。 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题
实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 【实验器材】 血红蛋白计、0. 1 mol/L盐酸(先用量筒量取8.5 mL的浓盐酸倒入容量瓶,然后将溶液加蒸馏水稀释至体积为1 L,此时的溶液就是0.1mol/L的盐酸)、滤纸片、95%酒精、蒸馏水。
1.用滴管加0.1N盐酸于血红蛋白稀释管内,到刻度“2”处。1.用滴管加0.1N盐酸于血红蛋白稀释管内,到刻度“2”处。 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 【实验方法与步骤】
2.用血红蛋白吸管吸血至刻度20μL处。 3.将血液加到盐酸中(避免起泡),震荡摇匀,静置10min。 4.用滴管向稀释管内逐滴加入蒸馏水(每加一滴要震荡摇匀), 边滴边观察颜色,直至颜色与标准比色板相同为止。稀释管 上液面的刻度读数即为每100ml血液中血红蛋白的克数。 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题
【注意事项】 1.吹血液入稀释管及洗净吸管时,不宜用力过猛。 2.蒸馏水需逐滴加入,多做几次比色,以免稀释过量。每 次比色时,应将搅拌用的玻璃棒取出,以免影响比色。 3.由于作过程过长而造成吸管内血液凝固。堵塞管孔时, 则要按下列溶液的顺序重复冲洗吸管,即用水 95%酒精 乙醚或丙酮。 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题
【思考题】 实验目的 1.血液中血红蛋白含量的多少是否能反映机体 的健康状况?为什么? 2.测定血红蛋白的实际意义是什么? 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题
实验三 小肠吸收和渗透功能的测定 • 【实验目的】 • 了解小肠吸收与肠内容物渗透压的关系。 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题
【实验原理】 实验目的 • 肠内容的渗透压是制约肠吸收的重要因素。同种溶液在一定浓度范围,浓度越高吸收越慢。过浓时可导致反渗透现象,要在浓度降至一定程度后,溶质才被吸收。而水的吸收是被动的渗透过程,即需待溶质被吸收后,溶液成低渗时,水再向肠壁、血液中转移。由于饱和硫酸镁溶液对肠壁具有反渗透作用,因此可用作泻盐。 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题
【实验材料】 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题 实验动物:兔 实验器材:注射器,兔手术台,手术器械,棉线,纱布, 烧杯,25%乌拉坦溶液,1/10000肾上腺素、 1/100000乙酰胆碱、饱和硫酸镁溶液、0.7%氯 化钠溶液
【实验方法与步骤】 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题 1.耳缘静脉注射将动物麻醉,仰卧固定于手术台上,腹部备皮。 2.沿腹中线做剖开腹腔,用线将小肠扎成各为8cm长的肠段A、 B和C。 3.在A段注入饱和硫酸镁溶液,B段注入30ml 0.7NaCl溶液,C段 注入蒸馏水溶液 4. 将肠段送入腹腔闭腹,30min后检查3肠段的变化。
30mL 0.7%氯化钠 5mL饱和硫酸镁 蒸馏水 B A C 在A段注入饱和硫酸镁溶液,B段注入30ml 0.7NaCl溶液,C段注入蒸馏水溶液。将肠段送入腹腔闭腹,30min后检查3肠段的变化
A B
【注意事项】 • 1.结扎肠段时,应防止把血管结扎。 • 2. 注意实验动物的保温。 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题
【思考题】 • 1. 为什么可以将硫酸镁作为泻药? • 2. 实验结果是什么?为什么会出现这种现象? 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题
实验四 蛙类心搏过程的观察和描记 【实验目的】 • 1.学习暴露蛙类心脏的方法,熟悉心脏的结构。 • 2.观察心脏各部分自动节律性活动的时相及频率。 • 3.学习在体蛙类心脏活动的描记方法。 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题
【实验原理】 • 两栖类动物的心脏为两心房、一心室,心脏的起搏点是静脉窦。静脉窦的自动节律最高,心房次之,心室最低。正常情况下,心脏的活动节律服从静脉窦的节律,其活动顺序为:静脉窦、心房、心室。这种有节律的活动可以用机械方法或通过换能器记录下来,称为心搏曲线。 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题
【实验原理】 窦性心律(sinus rhythm) 实验目的 实验原理 异位心律(ectopic rhythm) 实验器材 实验内容 注意事项 抢先占领 超速驱动抑制 思考题
【实验材料】 • 实验动物:蟾蜍或蛙 • 实验器材:常用手术器械、蛙板、蛙腿固定夹、蛙心夹、记纹鼓与通用杠杆或记录仪与张力换能器、秒表、滴管、培养皿、棉线。 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题
【实验方法与步骤】 • 1.暴露心脏破坏蟾蜍的脑和脊髓后背位固定于蛙板 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题 方法二 方法一
【实验方法与步骤】 • 2.观察心脏的结构 • 3.观察心搏过程仔细观察静脉窦、心房及心室收缩的 • 顺序和频率。 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题
【实验方法与步骤】 表1 斯氏结扎记录表 实验目的 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题
【思考题】 实验目的 1.斯氏第一结扎后,房室搏动发生什么变化,为什么? 2.斯氏第二结扎后,房室搏动频率有何不同,为什么? 实验原理 实验材料 实验内容 注意事项 思考题
实验五 蛙类心室的前期收缩和代偿性间歇 【实验目的】 • 1.学习在体蛙(或蟾蛛)心跳曲线的描记方法。 • 2.通过观察心室在不同收缩时期对额外刺激的反应,了解心肌的生理特性。 • 3.通过实验阐述心肌产生期前收缩的条件与代偿间歇出现的机制。 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题
-90~0~+30~-60mV 特点: 有效不应期特别长。 250~300ms 骨骼肌仅1~3ms 心肌细胞同神经纤维和骨骼肌细胞一样具有兴奋性 实验目的 有效不应期: 实验原理 实验器材 实验内容 相对不应期 注意事项 超常期 思考题 【实验原理】
期前收缩(premature systole)或额外收缩: 实验目的 在心肌的有效不应期之后,和下次节律兴奋传来之前,给予心肌一次额外的刺激,则可引发心肌一次提前的收缩。 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 代偿性间歇(compensatory pause)——在一次期前收缩之后,常有一段较长的心脏舒张期,称为代偿性间歇。 思考题
【实验材料】 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 实验动物:蟾蜍或蛙 实验器材:常用手术器械、蛙板、、蛙心夹、计算机采集系统、张力传感器、支架、双凹夹、双针形露丝刺激电极、滴管、培养皿(或小烧杯)、纱布、棉线、丝线、铁支架、任氏液。
【实验内容】 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 1.系统连接和仪器参数设置如下。 (1)打开Pclab计算机采集系统,接通张力传感器输人第一通道,刺激电极连接刺激输人端口。 (2) 点击“实验”菜单,选择“常用生理学实验”中的“期前收缩与代偿间歇”项目,系统进入该实验信号记录状态。 (3)设置参数:chl放大倍数200-500倍,直流藕合(DC),上限频率40 Hz,高通滤波“无”,自动触发,采样间隔1 - 5 ms;单刺激方式,阂上刺激强度2 -5 V,波宽1-5ms。
【实验内容】 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 2.取一只蟾蛛,用蛙针 破坏蟾蛛的脑和脊髓, 将其仰卧固定于蛙板上。
【实验内容】 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 3.观察蟾蛛心脏兴奋的传导次序,计算心率,记录正常的心搏曲线作为对照。并辨认心房波和心室波,确定趋向的哪一部分代表心室收缩,哪一部分代表心室舒张。
【实验内容】 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 4.按照图2-5-2的装置,将刺激电极安放在心室外壁,使之既不影响心搏又能同心室紧密接触。
【实验内容】 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 图2-5-3蛙类心室的期前收缩和代偿间歇波形 5.选择能引起心室发生期外收缩的刺激强度(于心室舒张期调试),分别于心室收缩期和舒张期的早、中、晚给予单个刺激(注意:刺激前后要有3-4个正常心搏曲线作对照,不可连续输出2个刺激)。观察心搏曲线有无变化。重复并肯定实验结果。
【实验内容】 实验目的 实验原理 实验器材 实验内容 注意事项 思考题 6.同上法,加大刺激强度,观察心室肌对额外刺激的反应。 7.心肌“全”或“无”的反应:用丝线在静脉窦与心房之间做一结扎,心脏跳动停止。然后给予,I-m1下刺激及不同强度的r-41上刺激,观察蛙心收缩强度的变化。