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relajación vibracional. conversión interna IC. relajación vibracional. S2. cruce intersistemas ISC. T1. k NR IC. k NR ISC. h P. h F. S1. h A. fluorescencia. fosforescencia. S0. DIAGRAMA DE JABLONSKI (1898-1980).
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relajación vibracional conversión interna IC relajación vibracional S2 cruce intersistemas ISC T1 kNR IC kNR ISC hP hF S1 hA fluorescencia fosforescencia S0 DIAGRAMA DE JABLONSKI (1898-1980)
LUMINISCENCIA emisión de luz desde un estado electrónicamente excitado • Se alcanza el estado excitado por absorción de luz en: • FLUORESCENCIA estado singulete excitado, transición permitida, ns • FOSFORESCENCIA estado triplete excitado, transición prohibida, ms • Se alcanza el estado excitado por una reacción química: • QUIMIOLUMINISCENCIA
10-8 s 10-15 s 10-3 s
OBSERVAR: laescala de tiempo de los procesos: • ABSORCION: ~ 10-15 seg • CONVERSION INTERNA: ~ 10-11-10-9 seg • FLUORESCENCIA: ~ 10-10 a 10-7 seg • FOSFORESCENCIA: ~ 10-6 a 1 seg (es una transición “prohibida” ) • RELAJACION VIBRACIONAL: ~ 10-12-10-10 seg Los pasos propiamente dichos de absorción y de emisión son extremadamente rápidos, tanto que los núcleos no llegan a moverse (principio de Franck-Condon). La absorción sólo da información del entorno inmediato a la molécula que absorbe. La relajación vibracional por lo general es mucho más rápida que la fluorescencia, entonces la molécula se relaja completamente y (en general) sólo vemos la emisión desde el estado S1. La escala de tiempo de fluorescencia es la misma que la escala de tiempo de movimientos moleculares, por eso el espectro de fluorescencia posee información de un entorno más amplio que el de absorción.
FLUORESCENCIA • 1er. paso: absorción o excitaciónenergía suficiente para llegar a nivel electrónico superior S1 o S2 λexc • 2do. paso: emisión de luz energía radiativa emitida menor que la absorbida, λem >λexc Corrimiento de Stokes ESTADO EXCITADO
= constante de velocidad de emisión RENDIMIENTO CUANTICO DE FLUORESCENCIA (Q): Rendimiento (Q) = fotones emitidos <1 fotones absorbidos en términos cinéticos de cada proceso: = constante de velocidad de decaimiento no radiativo
= tiempo devida intrínseca o natural, sin ningún proceso no radiativo = tiempo devida medida TIEMPO DE VIDA: tiempo promedio que un fluoróforo pasa en el estado excitado antes de volver al estado basal (por cualquier vía) TIEMPO DE VIDA NATURAL: es el tiempo de vida si sólo volviera al estado basal por fluorescencia Se relacionan:
Parámetros a medir en fluorescencia • Intensidad de fluorescencia (ISS) • Espectros de excitación y emisión (IF vs λ) • λmax(ex), λmax(em) • Rendimiento cuántico de fluorescencia (Q) • Vida media del fluoróforo () • Anisotropía (r) (tiempo de correlación rotacional) • Eficiencia RET (E) (distancia de Föster)
Intensidad de fluorescencia (estado estacionario) ISS Intensidad resuelta en el tiempo () Pulso de luz Iluminación continua
ESPECTROFLUORÍMETRO FUENTE DE LUZ Xe, Hg-Xe, Hg (high- low-P), Diodo (lase, LED) MONOCROMADORES excitación y emisión vs FILTROS ancho de banda polarizadores DETECTOR tubo fotomultiplicador (PMT) MUESTRA geometría de iluminación de la muestra La medida de IF es relativa a la geometría del equipo
Intensidad de Fluorescencia y concentración del fluoróforo Efecto de filtro interno
Cuantificación del fluoróforo midiendo Intensidad de fluorescencia IF IF (λex, λem) = IAΦ Z Z = factor instrumental Φ= rendimiento cuántico de F IA = IT - I0 = I0 (1 – exp(-2.3 ε c l) ε = coef. Absortividad a λexc c = concentración del fluoróforo Si Aλ << 1 IA = I0 (2.3 ε c l) IF (λex, λem) = I0Φ Z 2.3 εc l IF es proporcional a la conc. Si trabajamos con conc. diluidas
Usar soluciones diluidas A < 0..05 Control con solo solvente Usar adecuada λexc, filtro, conc. fluoróforo Filtrar la solución
Fluoróforos en bioquímica • Fluorescencia intrínseca fluorescencia natural, propia del sistema • Fluorescencia extrínseca agrego a la muestra un fluoróforo externo (sonda fluorescente)
Fluorescencia en: • Proteínas,fluorescencia intrínseca debido a residuos aminoacídicos aromáticos, predomina el triptofano. Además marcado con sondas fluorescentes (FITC, DNS). GFP y derivados. • Ácidos nucleicos,sin fluorescencia intrínseca, se agregan sondas fluorescentes catiónicas planares (EtBr, DAPI) • Membranas,no fluorescentes, se agregan sondas liposolubles con baja fluorescencia en agua (DPH, ANS) o fosfolípidos marcados
Fluorescencia en: • NAD(P)H • FAD, FMN • Piridoxal fosfato (PLP) • Clorofilas • Indicadores fluorescentes (pH, Na+, Cl-, Ca2+, O2)
4.7 ns en solución (2.3 ns FMN) 0.3-1 ns unido a prot. 0.4 ns en solución 1-5 ns unido a DH
Phe Abundancia: 3.5% ex = 260 nm, em= 282 nm (Q. ~ 5) Insensible al entorno Tyr Abundancia: 3.5% ex = 275 nm, em= 303 nm (Q. ~ 220) Insensible al entorno, quencheable Ionizable, tirosinato emite (<Q) Trp Abundancia: 1.1% ex = 295 nm, em= 350 nm (Q. ~ 770) Sensible al entorno, quencheable Varias
Sondasfluorescentesparaproteínas Fluoresceína (y Rodaminas) absorbe y emite en el visible, alto rendimiento, ε=80.000 M-1cm-1 DNS-Cl sensible a polaridad del entorno, fluorescenciapolarizada
Compuestos de B (BODIPY) absorben y emiten en el visible, alto rendimiento, ε=80.000 M-1cm-1, fotoestables, insensible al solvente y pH
Sondasfluorescentesparaácidosnucleicos Bases modificadasfluorescentes
GFP = Green Fluorrescent Protein Formación espontánea del fluoróforo al plegarse
hν X X* hν’ ¿Qué le puede suceder al estado excitado del fluoróforo antes de emitir y volver al estado basal? Relajación por solvente Transferencia de energía Quenching Transferencia de carga Disociación de H+ Formación de complejos Formación de oligómeros (ns)
Efectos del solvente y del entorno local sobre la fluorescencia HO Acido dimetilamino naftalen sulfónico (dansilo) H = hexano CH = ciclohexano T = tolueno EA = acetato de etilo Bu = butanol
Efectos del solvente y del entorno k 1/ k >> 1/ Corrimientos de Stokes dinámicos
Cambio en la emisión por cambio de solvente o cambio del entorno (ej. unión a proteína) Miro la fluorescencia de la sonda fluorescente, el TNS
Cambio en la emisión por cambio de solvente o cambio del entorno (ej. unión a proteína) HSA = albúmina humana ANS = Anilinonaftalensulfonato (fluoróforo muy sensible a la polaridad entorno)
Determinar constantes de unión de un ligando si este es fluorescente y su fluorescencia cambia con la unión o si la fluorescencia intrínseca cambia por efecto de la unión de un ligando
Emisión del triptofano es sensible al entorno (ej. desnaturalización de proteína) N = nativa U = desplegada “unfolded”
Usos de fluorescencia en bioquímica Localización subcelular Cambios en la concentración Interacciones moleculares Cambios conformacionales Distancias intra/intermoleculares Difusión rotacional Caracterización estructural Actividad enzimática ●●●