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手足口病的实验诊断

手足口病的实验诊断. 安徽省疾病预防控制中心 2009 . 3 . 11. 手足口病的病原. 手足口病( hand-foot-mouth disease, HFMD )由人肠道病毒感染引起。 人肠道病毒为小 RNA 病毒科( Picornaviridae ),肠道病毒属( Enterovirus )的一组单股正链 RNA 病毒。其中包括埃可病毒( 31 个血清型)、柯萨奇病毒 A 组( 23 个血清型)和 B 组( 5 个血清型),还包括 3 个脊髓灰质炎病毒血清型和人肠道病毒 68-71 型。. 人肠道病毒的毒粒结构. ~ 30nm 二十面体对称 无包膜.

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手足口病的实验诊断

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Presentation Transcript


  1. 手足口病的实验诊断 安徽省疾病预防控制中心 2009 . 3. 11

  2. 手足口病的病原 • 手足口病(hand-foot-mouth disease, HFMD)由人肠道病毒感染引起。 • 人肠道病毒为小RNA病毒科(Picornaviridae),肠道病毒属(Enterovirus)的一组单股正链RNA病毒。其中包括埃可病毒(31个血清型)、柯萨奇病毒A组(23个血清型)和B组(5个血清型),还包括3个脊髓灰质炎病毒血清型和人肠道病毒68-71型。

  3. 人肠道病毒的毒粒结构 • ~30nm • 二十面体对称 • 无包膜 Courtesy of Linda M. Stannard, University of Cape Town, S.A.h

  4. 人肠道病毒发现的历史 • 脊髓灰质炎病毒:1909年首次鉴定出该病毒,1949年,利用细胞培养的方法增殖病毒,为疫苗的研制奠定了基础。 • 柯萨奇病毒:1948年在美国纽约Coxsackie镇,将两名麻痹患儿的标本接种至乳鼠体内,分离出来的一组病毒定名为柯萨奇病毒。根据它们在乳鼠上产生的组织病理学变化和在细胞培养上的能力,分为柯萨奇病毒A组和B组。 • 埃可病毒:1951年在一名无症状的儿童的粪便标本中分离到,在细胞培养上可以造成致细胞病变,但对乳鼠和灵长类动物不致病。 • 新肠道病毒:随后新发现的病毒被按照序号命名(69~71),最近,已经命名至102型

  5. 肠道病毒主要血清型

  6. 手足口病的常见致病病原 多种肠道病毒都可引起HFMD,主要为: • 柯萨奇病毒A组的4~7、9、10、16型 • B组的1~3、5型 • 埃可病毒的部分血清型 • 肠道病毒71型 最常见的为CV-A16和EV71

  7. 肠道病毒的抵抗力 • 肠道病毒无包膜,乙醚、75%酒精、表面活性剂等均不能将其灭活。 • 对紫外线及干燥敏感;各种氧化剂(高锰酸钾、漂白粉等)、甲醛或56℃ 30min都能灭活病毒 • 病毒在4℃可存活1年,-20℃可长期保持感染性 • 病毒RNA有感染性。

  8. 手足口病的标本采集 (一)粪便标本 采集病人发病7日内的粪便标本,用于病原检测。粪便标本采集量5~8g/份,采集后立即放入无菌采便管内,4℃暂存立即(12h内)送达实验室,-20℃以下低温冷冻保藏,需长期保存的标本存于-70℃冰箱。 (二)脑脊液标本 出现神经系统症状的病例,要采集脑脊液标本,进行病原和抗体检测。采集时间为出现神经系统症状后3日内,采集量为1.0~2.0ml。采集后立即装入无菌带垫圈的冻存管中,4℃暂存立即(12h内)送达实验室,-20℃以下低温冷冻保藏,需长期保存的标本存于-70℃冰箱。

  9. 手足口病的标本采集 (三)血清标本 采集急性期(发病0~5天)和恢复期(发病14~30天)双份配对血清用于抗体检测。检测IgM时,采集 (发病7~20天)血。静脉采集3~5ml全血,置于真空无菌采血管中,自凝后,分离血清,将血清置于-20℃以下冰箱中冷冻保存。 (四)咽拭子标本 采集病人发病3日内的咽拭子标本,用于病原检测。用专用采样棉签,适度用力拭抹咽后壁和两侧扁桃体部位,应避免触及舌部;迅速将棉签放入装有3~5ml保存液(细胞维持液)的采样管中,在靠近顶端处折断棉签杆,旋紧管盖并密封,4℃暂存立即(12h内)送达实验室,-20℃以下低温冷冻保藏,需长期保存的标本存于-70℃冰箱。

  10. 手足口病的标本采集 (五)疱疹液 可同时采集多个疱疹作为一份标本,用消毒针将疱疹挑破用棉签蘸取疱疹液,迅速将棉签放入内装有3~5ml保存液(维持液或生理盐水)的采样管中,在靠近顶端处折断棉签杆,旋紧管盖并密封。所采集标本4℃暂存立即(12h内)送达实验室,-20℃以下低温冷冻保藏,需长期保存的标本存于-70℃冰箱。

  11. 标本采集器械要求 • 注射器:医用(5ml和10ml)一次性注射器 • 棉拭子:塑料杆 • 全血收集管:10ml螺口塑料管(外螺旋、带密封垫圈) • 血清保存管:2 ml螺口塑料管(外螺旋、带密封垫圈),可耐深低温(液氮保存) • 粪便保存管:5-20 ml螺口塑料管(外螺旋、带密封垫圈),可耐深低温(液氮保存)-全国POLIO网络实验室

  12. 标本采集器械要求 病人标本的采集运输和保藏 • 鼻咽拭子保存管:10 ml螺口塑料管(外螺旋、带密封垫圈),可耐深低温(液氮保存) • 痰液保存管:50 ml螺口塑料管(外螺旋、带密封垫圈),可耐深低温(液氮保存) • 尸检组织冻存管:50ml螺口塑料管(外螺旋、带密封垫圈);尸检(每一个样品换手术刀) • 记号笔:油性,防水

  13. 标本采集注意事项 在手足口病的实验室诊断中,从疱疹液或脑脊液 中分离病毒具有很高的诊断价值。 用于采集咽拭子的无菌拭子要放在适当的保存液中,如维持液或生理盐水,以防干燥。

  14. 标本采集注意事项 • 为了保证检测结果的准确性和有效性,标本应在病例发病后尽早采集,尽快检测。 • 不能立即检测的标本应冷冻保存。 • 对于血清学诊断,急性期血清应该在发病后尽早采集,恢复期血清在发病2-4周后采集。

  15. 手足口病的实验室诊断 手足口病的诊断一般是通过采集适当的临床标本后进行基因检测、抗原检测、血清学抗体检测、病毒分离和病鉴定

  16. 手足口病的实验室诊断方法 • 病毒分离 • 抗体检测 • 核酸检测 • 蛋白/核酸芯片

  17. 标本 测双份血清 中和抗体滴度 RT-PCR Real time RT-PCR 检测病毒核酸 序列测定 病毒分离 CPE阳性 无CPE 中和定型 RT-PCR 及序列测定 常规实验 补充实验 非肠道病毒 肠道病毒 手足口病的实验室检测流程

  18. 病毒分离培养 • 用于病毒分离的标本: 包括粪便、咽拭子和疱疹液,如果患者出现神经系统症状,可以采集脑脊液标本 • 适用的细胞 RD细胞(人胚胎横纹肌肉瘤细胞)、Hep-2细胞(人喉上皮癌细胞)

  19. 病毒分离培养 • 标本的处理 1、粪便:2g 加PBS 10ml,振荡混匀,1500g低温离心20min,上清0.2ml接种敏感细胞 2、咽拭子:于采样管中充分洗涤拭子, 4℃下 10000rpm离心20min,上清0.2ml接种敏感细胞 3、脑脊液和疱疹液:直接接种

  20. 病毒分离培养 • 培养观察: 36℃培养逐日观察,第1代培养见可疑CPE 至观察满7天后再继续冻融传代,待稳定CPE出现后, - 20℃或- 70℃冻存以备进一步鉴定; 如果7天之后没有出现CPE,需盲传2代继续观察,盲传2代后仍不出现CPE则判定为阴性; • 鉴定:中和试验

  21. 血清抗体检测 • 方法 中和实验、 ELISA • IgM:单份血:急性期 • IgG :双份血:急性期,恢复期 • 阴转阳,四倍升高,四倍降低均可诊断近期感染

  22. 病毒核酸检测—RT-PCR  RT-PCR(Reverse Transcriptase PCR) • 用于RNA病毒的检测,酶促催化使RNA逆转录成cDNA第一链,逆转录与第一次PCR在同一系统内进行,逆转录完成后,加热灭活逆转录酶,然后开始PCR扩增。一条寡聚脱氧核苷酸引物先与mRNA杂交,然后由依赖RNA的DNA聚合酶催化合成相应互补的cDNA拷贝,后者能进一步用于PCR扩增。

  23. 病毒核酸检测—RT-PCR 方法特点: • 快捷、简便 • 高度灵敏、特异 • 具有病原诊断意义 • 高效的通用型技术平台

  24. 标本的预处理 粪便标本:采用氯仿进行处理。 肛拭子/咽拭子标本:咽拭子要在标本保存液中充分搅动,然后在4℃下,10000 rpm离心20min 。 疱疹液和脑脊液:直接用于RNA提取。

  25. RNA的提取 可使用商业化试剂盒从临床标本中提取病毒RNA 简化操作、规范方法、条件一致、排除干扰 QIAGEN Viral RNA Mini Extraction Kit(CAT:52904)适合临床标本和病毒培养物标本 QIAGEN Rneasy Mini Kit(CAT: 74104) 适合组织和咽拭子标本

  26. 引 物 • 人肠道病毒(包括EV71、CA16、CA24v、EV70)核酸检测通用引物 PE2(上游):5`- TCC GGC CCC TGA ATG CGG CTA ATC C -3` PE1(下游):5`- ACA CGG ACA CCC AAA GTA GTC GGT CC -3`

  27. 引 物 EV71核酸检测引物序列: EV71-S(上游):5`-GCA GCC CAA AAG AAC TTC AC -3` EV71-A(下游):5`-ATT TCA GCA GCT TGG AGT GC -3`

  28. 引 物 CA16核酸检测引物序列: Cox A16-S(上游):5`-ATT GGT GCT CCC ACT ACA GC-3` Cox A16-A(下游);5`-TCA GTG TTG GCA GCT GTA GG-3`

  29. 反应体系 根据自己实验室的实际情况建立各自RT-PCR反应体系 配下列试剂主溶液: 10×PCR Buffer(含Mg2+)·················································5.0μl dNTPs(2.5mM each)······················································· 2.0μl 上游引物(0.1μg/μl)························································1.0μl 下游引物(0.1μg/μl)························································1.0μl RNA酶抑制剂(RNasin,40U/μl)······································ 0.5μl Taq DNA聚合酶(5U/μl)················································· 0.5μl AMV逆转录酶(10U/μl)·················································· 1.0μl 模板RNA·········································································· 3.0μl RNase Free dH2O··························································· 36.0μl 50.0μl

  30. 温度循环参数 在PCR仪上进行RT-PCR反应,反应步骤如下: 42℃························45min 95℃························3min 95℃························20s 50℃························25s ×32个循环 72℃························30s 72℃························10min 4℃························Soak

  31. 结果解释 通过比较标本的PCR产物与阳性对照的PCR产物在凝胶上的位置以及大小来解释结果。

  32. RT-PCR实验结果解释

  33. 实验室诊断原则 • 人肠道病毒在自然界广泛存在且种类繁多,一病多原、一原多症是肠道病毒感染的重要特征。因而应对血清诊断及病原诊断的实验室结果作严格评价,必须结合临床症状及环境因素流行病学分析,以确立病毒与疾病的病原学关系。 • 一般采取的原则为: • (1)病毒分离阳性率远高于对照人群; • (2)病程中有特异性抗体变化并排除其他病毒感染; • (3)从病变组织中分离出病毒。

  34. 实验结果的诊断意义 从疑为肠道病毒感染的脑炎/脑膜炎患者的脑脊液中检测到相应的肠道病毒核酸(RT-PCR法),或分离到病毒或肠道病毒IgM阳性,即可证明是该肠道病毒引起的中枢神经系统感染。 从疑为死于EV71(或其它肠道病毒)的尸检标本中检测到相应的肠道病毒核酸,或分离到病毒或肠道病毒IgM阳性,即可证明是该肠道病毒是病因。 从HFMD患者的疱疹液中检测到相应的肠道病毒核酸,或分离到病毒,那么该病毒就是病因病原。

  35. 实验结果的诊断意义 当无法进行病毒分离或未分离到病毒时,血清学诊断方法可以作为病毒感染的间接证据。肠道病毒有时引起无症状感染,只从个别HFMD患者粪便标本中分离到EV71(或其它肠道病毒)时,不能轻易下结论EV71是病因,应该扩大样本量,所以实验结果的实际意义应结合临床过程和流行病学资料进行解释。

  36. 手足口病检测实验室相关问题 1、实验室生物安全问题:必须重视的问题 • 实验人员受过生物安全培训 ① 有防范潜在生物危害的意识 ② 熟悉生物安全规程,掌握生物安全技能 • 实验室自己的生物安全指南 • 合格的生物安全实验室 • 实验室文件化的规程及方法(包括常规的和特殊的)

  37. 手足口病检测实验室相关问题 2、PCR实验室质量控制问题: 保证实验结果可靠的必要手段 • 实验对照:阳性、阴性、试剂、空白对照 • 控制实验室核酸污染 ⑴ 试剂污染 ⑵ 器械污染 ⑶ 实验过程污染

  38. 手足口病检测实验室相关问题 3、实验结果的应用问题: 综合分析、排除干扰、合理运用 ⑴ 阳性结果:排除假阳性干扰 分析阳性结果的价值 ⑵ 阴性结果:分析可能的原因(样品采集?过程规范?核酸降解?试剂质量?临床信息误导?)

  39. 欢迎指正 谢 谢

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