Ambiente

1. Investigación en una parvada de Agapornis de Fischer (Agapornis fischeri) con daño en el Plumaje.

2. Ambiente • Aviario exterior rodeado con malla con sustrato natural y plantas. • Varias especies Africanas • Arbóreos • Perico psitacula (PP), paloma verde Africana, palomas moteada, martín pescador cabeza gris, cigüeña pico zapato, tejedores cabeza negra. • En Suelo • Zancudo playero, Ganso pigmeo Africano (acuático)

3. Dieta • Concentrado para Psitácidos • Semillas • Frutas varias y vegetales • Agua ad libitum • Tx: Sólo cuando se necesitaba, no en el periodo del caso

4. Primavera 1997 • 0.0.75 parvada mixta de adultos con alta reproducción • 1991: 50% parvada proviene de una misma Institución • 1993: 25% parvada proviene de una segunda Institución • 1995: 25% parvada proviene de la segunda Institución • 1997: “Nuevo” Agapornis enmascardos (Agapornis personata) se encontró en el aviario • No estaba en el inventario de la colección.

5. Caso Índice-Día 1 • Agapornis 1997 Juvenil presentado por inhabilidad para volar (sólo distancias cortas) tiende a correr. • Examen Físico • Alerta, buena condición corporal • Cloaca/oral cavidad normal • Plumaje irregular, y esponjado con plumaje de adulto pequeño y curvo. • Hospitalizado en aislamiento • Diferenciales?

6. Pruebas Diagnósticas • Sangre (Hemograma, Química Sanguínea) • 10% de peso corporal (40g) • Normal • Extracción de plumas • Puntas nudosas • Histopatología • Citología exprimido de folículos • Recuerda: • Usa Heparina como anticoagulante • 10% de peso corporal en ml sangre para realizar la prueba. • Ejem: Ave de 40g = 0.4ml de sangre.

7. Preguntas: • ¿Cuál es su definición del caso? • ¿Es esto un brote potencial?

8. Día 7 • La examinación • Las aves permanecieron alertas • Comiendo bien y aumentando de peso y tamaño • Plumaje mas errático que en la presentación inicial • La examinación oral revelo ulceración del paladar con ramfoteca sin brillo • Pruebas diagnósticas • Se sometió sangre entera para poliomavirus y circovirus PBFD (Enfermedad de pico y pluma de los psitácidos) DNA • Mas citologías de exprimidos de folículos de plumas con hallazgos similares que las anteriores.

9. Día 10 • Resultado de histopatología de plumas colectadas en el Día 1 • Necrosis epitelial • 85% de las células contenían cuerpos de inclusión intranucleares o introcitoplasmáticos • Resultados de la secuencia de DNA • (+) Circovirus (PBFD) • (--) Poliomavirus • Eutanasia • Sometido para histopatología

10. Día 17 • Histopatología de la necropsia • Ligera involución de la bolsa de Fabricio • Necrosis del paladar • Anormalidades del plumaje en todo el cuerpo • No más hallazgos

11. Definición del caso clínico • Agapornis pollos • Plumaje irregular de mala calidad • Aparentemente sanos aparte del plumaje • Folículos de plumas afectadas sin infección aparente • PBFD secuencia de DNA POSITIVO

12. Agente etiológico de PBFD • Circovirus • No-envuelto • Isométrico/Esférico • DNA sencillo • Partícula viral mas pequeña • Relativamente estable en el ambiente • NO afectada por desinfectantes • “Descubierto” en Australia • 1970’s, pudo haber estado presente en los 1800’s • Endémica en poblaciones de psitácidos en libertad y cautiverio

13. Definición del Caso • Visiblemente aparente/anormalidades de pico substanciales • 2 PP, 3FL (Todos pollos) • Visiblemente apatente/anormalidades de plumaje substanciales • 2 PP, 10 FL (Jóvenes adultos) • Postmortem completo de estos individuos • Necropsia completa • Preparación citológica de folículo de pluma para cuerpos de inclusión • PBFD secuencia de DNA • Se desconoce el origen del Agapornis que no era de la colección • Se sospecha que fue liberado por alguien del público

14. Especies susceptibles • Aviar • Psitácidos del viejo mundo son mucho mas susceptibles • Agapornis y Cacatuas • Del nuevo mundo son susceptibles, con mas probabilidad de recuperarse • El rango exacto de huéspedes se desconoce • Los columbiformes tienen un circovirus separado que es específico de la especie. • Los psitácidos tienen un circovirus común a todas las especies. • Otras aves no-psitácidas pueden seroconvertir • Pero no produce la enfermedad clínica

15. Preguntas: • ¿Cuál es su definición del caso? • ¿Es esto un brote potencial?

16. Factores de Transmisión • Parece ser el factor primario de infección • La eliminación del grupo de edad reduce el potencial de transmisión • La fuente primaria de infección es polvo de folículo de pluma que contamina el ambiente • El virus se puede eliminar oralmente y en el excremento • Inhalación (primaria), ingestión • Transmisión vertical • La incubación artificial no la elimina

17. Cierre del Caso • El caso es cerrado en el sentido CLÍNICO • El problema es diagnosticado y resuelto • La epidemiología fue estrictamente CONTROL • SIN EMBARGO, vea más allá de lo que se ve inmediatamente • ¿De dónde se originó este Brote? • ¿Qué permitió que los 5 animales fueran infectados? • ¿Podría esto suceder nuevamente? • La Epidemiología es ahora PREVENCIÓN

18. Control • Cuarentena-durante el Brote • Aislamiento y prueba de individuos en riesgo • Monitoreo de individuos potencialmente susceptibles • Eliminar la reproducción (remover el grupo de edad susceptible) • Remover aves con mal plumaje • Evaluar aves de reemplazo con más cuidado

19. Control • Cuarentena—a largo plazo • Controlar la reproducción • Parvadas de un sólo sexo para el 2000 • Implementar el monitoreo pre-embarque • Prevenir la entrada de PBFD “+”s

20. Investigación del Ambiente • Revisión de todas las aves en riesgo por medio de examen físico • Psitácidos • Columbiformes-virus diferente = signos clínicos diferentes • Eutanasia de todas las aves en riesgo con hallazgos consistentes con el presente caso • Cuarentenar todas las aves en riesgo del exhibidor y colectar sangre para prueba contra PBFD secuencia de DNA

21. Moratoria de Reproducción para el control • 1996-97 • NO permitida la reproducción • Sólo pocos pollos presentes al no poder encontrar todos los nidos • 1998 • Se permite la reproducción • Algunos pollos • 1999 • Se permite la reproducción • Número abundante de pollos nacidos • La población creció de 50 a 100 en una temporada

22. ¿Cómo y por qué? Futuros Brotes: • Verano1999 • Día 1: Múltiples pollos de Agapornis presentados con plumaje irregular y en mal estado • Examen físico • Pruebas diagnósticas

23. Examen físico • Aves débiles y enfermas con animales pequeños en varios nidos, cavidad cloacal/oral normales • Plumaje irregular, y condición pobre de plumaje de adulto • Eutanasia (n=8) para pruebas diagnósticas por presentar tamaño pequeño

24. Pruebas Diagnósticas • Pruebas de Sangre 10% del peso corporal (15gm) • Secuencia de DNA • Extracto de plumas • Puntas nudosas • Remisión de citología e histopatología • Respuesta hererofílica abundante • Bacilos Bacterianos • Células epiteliales con acumulación basofílica en el citoplasma

25. Definición del caso para el diagnóstico Clínico: • Pollos de Agapornis • Plumaje irregular en mal estado • Apariencia enfermiza • Folículos de plumas con bacterias

26. ¿Brote Potencial? • ¿Se han presentado Agapornis con problemas de plumaje en algún zoológicos? • Si • ¿Se han presentado Agapornis con problemas de plumaje en este zoológico? • Si • ¿Cuantos Agapornis esperaría encontrar con problemas de plumaje en este momento? • Pollos

27. ¿Brote Potencial? • Esto puede ser un Brote • La expectativa es n=0 para pollos en esta parvada y debería estar terminado el problema de PBFD

28. Brote Potencial • Día 4 • La secuencia de DNA es NEGATIVA para PBFD • Día 7 • Pollos adicionales fueron examinados y se colectaron plumas • Preparación citología de exprimido de cañón de pluma • Consistente con el examen anterior, además de encontrar elementos fúngicos • Histopatología del Día 1 • Bolsa de Fabricio normal, mucosa oral normal, dermatitis extensa asociada con folículos de plumas

29. Definición del caso para el diagnóstico Clínico: • Pollos de Agapornis • Plumaje irregular en mal estado • Enfermedad aparente • Folículos de plumas con bacterias • Negativo a PBFD secuencia de DNA

30. ¿Brote Potencial? • ¿Se han presentado Agapornis con problemas de plumaje en algún zoológico? • Si • ¿Se han presentado Agapornis con problemas de plumaje en este zoológico? • Si • ¿Cuantos Agapornis esperaría que presentaran problemas de plumaje en este momento? • Todos los Pollos

31. ¿Brote Potencial? • Esto es un Brote ya que se espera encontrar n=0 de pollos en esta parvada, pero no es PBFD del Brote anterior

32. Investigación de origen • 1995 • 25% de la parvada se recibió de la segunda institución • Cuarentena completa y liberados • Pruebas virales • Polioma y circovirus realizada en el 50 % de la adquisición

33. Fuente de brote secundario. • Cambio poblacional repentino, incremento en el uso de nidos • Se determinó realizar saneamiento en los nidos - desinfección • Se administró terapia de soporte con fluidos y antibióticos a los pollos afectados • Eutanasia de los pollos mas afectados con histopatología para vigilar la no presencia de PBFD

34. BIBLIOGRAFIA • 1. Kiatipattanasakul-Banlunara, W., R. Tantileartcharoen, K. Katayama, K. Suzuki, T. Lekdumrogsak, H. Nakayama, and K.Doi. 2002. Psittacine beak and feather disease in three captive sulphur-crested cockatoos (Cacatua galerita) in Thailand. J. Vet. Med. Sci. 64: 527-529. • 2. Kock, N.D., P.U. Hangartner, and V. Lucke. 1993. Variation in clinical disease and species susceptibility to psittacine beak and feather disease in Zimbabwean lovebirds. Onderstepoort J. Vet. Res. 60: 159-161. • 3. Rahaus, M., and M.H. Wolff. 2003. Psittacine beak and feather disease: a first survey of the distribution of beak and feather disease virus inside the population of captive psittacine birds in Germany. J. Vet. Med. Ser. B 50: 368-371. • 4. Ritchie, B.W., R.D. Niagro, K.S. Latimer, W.L. Steffens, D. Pesti, J. Ancona, and P.D. Lukert. 1991. Routes and prevalence of shedding of psittacine beak and feather virus. Am. J. Vet. Res. 52: 1804-1809. • 5. Ritchie, B.W., F.D. Niagro, K.S. Latimer, P.D. Lukert, W.L. Steffens, P.M. Rakich, and N. Pritchard. 1990. Ultrastructural protein composition and antigenic comparison of psittacine beak and feather disease virus purified from four genera of psittacine birds. J. Wildl. Dis. 26: 196-203. • 6. Ritchie, B.W., and K. Carter. 1995. Circoviridae. In: Avian Viruses Function and Control. Wingers Publishing, Inc., Lake Worth, Florida. Pp: 223-252. • 7. Ritchie, P. A., I.L. Anderson, and D.M. Lambert. 2003. Evidence for specificity of psittacine beak and feather disease viruses among avian hosts. Virology 306: 109-115.