Reducing bacterial aerosol contamination with a chlorhexidine gluconate pre-rinse

1. Reducing bacterial aerosol contamination with a chlorhexidine gluconate pre-rinse DD Logothetis and JM Martinez-Welles J A D A 1995 Redução de contaminação bacteriana de aerossol, com pré-lavagem de gluconato de clorexidina ALUNOS: Luizete de Sousa Alexandre Pereira Nelo Augusto Poletto

2. INTRODUÇÃO: Diante do interesse profissional em relação a produção de aerossóis odontológicos, e uma potencial transmissão de doenças aos clínicos e pacientes, o departamento de saúde e segurança ocupacional dos Estados Unidos exigiu que os odontólogos criem maneiras de minimizar a contaminação profissional – paciente (CONTAMINAÇÃO CRUZADA) ao utilizar equipamentos auxiliares sem prejudicar o meio ambiente.

3. Aerossóis são gerados quando o ar, jatos de água e peças de turbina de ar (caneta alta rotação, seringa tríplice, raspadores tipo ultra-som, jatos de bicarbonatos) são utilizados em procedimentos odontológicos. • Segundo Miller, aerossóis gerados pelas bocas dos pacientes continham até 100.000 bactérias por pé cúbico de ar.

4. Estudo realizado na Grã-Bretanha em 1931, indicou que infecções transmitidas pelo ar e a tuberculose ocorreram com maior frequência em dentistas do que em profissionais de outras ocupações. Vinte anos mais tarde, Shaw relatou que estudantes de odontologia tinham mais propensão a contrair tuberculose do que estudantes de medicina.

5. Profissionais da saúde bucal possuem maior risco de entrar em contato com o vírus da hepatite B através da saliva com sangue contaminado e fluidos gengivais pela aerolização produzida pelos aparelhos odontológicos.

6. Escolha da Amostra Seleção: 18 participantes; 10 gênero masculino 8 gênero feminino Divididos em 3 grupos; Idade: entre 25 e 54 anos (média de 38 anos); “ÍNDICE DE RESÍDUOS DE PLACAS SIMPLIFICADOS”; Coeficiente de Correlação de Pearson; Analise Multivariada; Teste Qui-Quadrado.

7. Critérios de inclusão : • Possuir mínimo 20 dentes permanentes; • Pontuação de placa entre 1,8 à 3,0 no “Índice de Resíduo de Placa Simplificado” Critérios de exclusão : • Utilizando medicação que contra-indicavam o tratamento. • Pacientes hipertensos, dietas de restrição ao sódio, complicações respiratórias, doenças cardíacas, doenças reumáticas, gravidez, uso de imunossupressores ou anticoagulantes ou de necessidade de profilaxia antibiótica.

8. Materiais e Métodos • Utilização de Placas de Agar de sangue de carneiro; • Solução de gluconato de clorexidina à 0,12%; • Anti-séptico bucal com óleos essenciais; • Água; • Aparelho de polimento à ar; • Local: Consultório medindo 12pés x 7pés x 10 pés; • Troca de ar de 13x por hora

9. Localização das placas de agar• Ponto de referência1=mascara do operador2=2pés do ponto de referência3=3pés do ponto de referência4=3pés do ponto de referência5=3pés do ponto de referência6=5pés do ponto de referência7=6pés do ponto de referência8=9pés do ponto de referência Figura 1. Localização das placas de agar. A área utilizada mede 12pés x7pés x10pés. O ar foi trocado 13 vezes por hora.

10. Figura 2. Colônias formadas nas placas de agar, após pré-lavagem com clorexidina, enxaguatórios ou água.

11. VISUALIZAÇÃO DOS RESULTADOS Figura 1. Figura 2.

12. Resultados: Não houve diferença significativa nas unidades formadoras de colônias entre o anti-séptico bucal e a água. Esta análise revelou que unidades formadoras de colônias diminuíram de acordo com a distância do operador nos casos tratados com clorexidina.

13. Discussão: Vários pesquisadores têm documentado a importância do controle e diminuição de aerossóis bacterianos produzidos por aparelhos à ar. Relatórios têm associado estes aerossóis à infecções respiratórias, oftalmológicas e de pele, além de tuberculose e hepatite B. Ao conduzir este estudo, avaliou a capacidade do pré enxágue para diminuir a quantidade microbiana antes do uso de instrumentos produtores de aerossol.

14. Os resultados que obtivemos do grupo de anti-séptico bucal estão de acordo com dados relatados por Fine e colaboradores, que documentaram a diminuição de atividade microbiana. Esta leve diminuição na atividade microbiana pode ser resultado da capacidade do anti-séptico bucal inibir o crescimento microbiano. Embora em ambos estudos o anti-séptico reduziu o crescimento de unidades formadoras de colônia, os dados sugerem que um pré enxaguamento com clorexidina é superior na redução de bactérias aerolizadas.

15. As limitações deste estudo devem ser consideradas ao interpretar os resultados. No entanto, os resultados claramente sugerem que a clorexidina é umamedida eficaz na redução primaria da contaminação cruzada por aerossol durante o uso de polidor à ar na pratica odontológica. São necessários futuros estudos para investigar organismos patogênicos viáveis gerados durante o uso de polidor à ar. Estudos contínuos poderiam incluir uma repetição deste estudo usando uma unidade de mostrador de ar, que defina os reais efeitos respiratórios dos aerossóis, um período mais curto entre pré-enxague e polimento, e vários volumes de pré-enxague ou tempos de incubação.

16. Conclusão: Este estudo sugere claramente que uma pré lavagem rotineira com clorexidina poderia eliminar a maioria de aerossóis bacterianos gerados pela utilização do aparelho de polimento à ar, proporcionando uma proteção de até 9 pés do centro de operação.

17. Ms. Logothetis is anassociate professorand assitant director,Division ofDental Programs,University of NewMexico, Albuquerque. Ms. Martinez-Welles Is an associate professor, Division of Dental Programs, University of New Mexico, Albuquerque.

18. Referências Bibliográficas 5. Shaw BA. Tuberculosis in medical and dental students. Lancet 1952;2:400-4. 6. With modern dentistry, a new occupational hazard. Dent Stud 1967;46:36-7. 7. Karayiannis P, Novick DM, Lok AS, et al. Hepatitis B virus DNA in saliva, urine and seminal fluid of carriers of hepatitis B antigen. Br Med J 1985;290:1,853-5. 8. Villarejos VM, Visana KA, Gutierrez AD, et al. Role of saliva, urine, and feces in the transmission of type B hepatitis. N Engl J Med 1974;291:1,375-8. 9. Micik RE, Miller ML, Mazzarella MA, et al. Studies on dental aeriobiology: bacterial aerosols generated during dental procedures. J Dent Res 1969;48(1):49-56. 10. Holbrook WP, Muir KF, MacPhee IT, Ross PW. Bacterial investigation of the aerosol from ultrasonic scalers. Br Dent J 1978;144:245-7. 1. Federal Register. Department of Labor. Occupational Safety and Health Administration. Occupational exposure to bloodborne pathogens; final rule. 29 CFR part 1910.1030. Part II. Dec. 6, 1991; 56(235):64175-82. 2. Miller RL. Generation of airborne infection by high speed dental equipment. J Am Soc Prev Dent 1976;6(3):14-7. 3. Peyton FA. Status report on dental operating handpieces. Council on Dental Materials and Devices. JADA 1974;89:1,162-70. 4. Registrar General, Great Britain. Death from respiratory tuberculosis. London: H.M. Printing Office; 1931.

19. 16. Glenwright HD, Knibbs J, Burdon DW. Atmospheric contamination during use of an air polisher. Br Dent J 1985;159(9):294-8. 17. Weaks LM, Lescher NB, Holroyd SV, et al. Clinical evaluation of the Prophy-jet as an instrument for routine removal of tooth stain and plaque. J Periodontal 1984;55:486-8. 18. Orton GS. Clinical use of an air-powder abrasive system. Dent Hyg 1987:66:513-8. 19. Fine DH, Mendieta C, Barnett ML, et al. Efficacy of preprocedural rinsing with an antiseptic in reducing viable bacteria in dental aerosols. J Periodontol 1992;63:821-4. 20. Muir KF, Ross PW, MacPhee IT, et al. Reduction of microbial contamination from ultrasonic scalers. Br Dent J 1978;145(3):76-8. 21. Veksler AE, Kayrouz GA, Newman MG. Reduction of salivary bacteria by preprocedural rinses with chlorhexidine 0.12 percent. J Periodontol 1991;62(11):649-51. 22. Bay NL, Overman PR, Krust-Bray K, et al. Effectiveness of antimicrobial mouthrinses on aerosols produced by an air polisher. J Dent Hyg 1993;67(6):312-7. 11. Larato DC, Ruskin PF, Martin A, et. al. Effect of a dental air turbine drill on the bacterial counts in air. J Prosthet Dent 1966;16:758-65. 12. Gross K, Overman P, Cobb C, et al. Aerosol generation by two ultrasonic scalers and one sonic scaler. J Dent Hyg 1992;66:314-8. 13. Cavitron Prophy-jet, Dental prophylaxis unit. Instruction manual. York, Penn.: Dentisply International Inc.;1983. 14. Logothetis DD, Gross K, Eberhart A, et al. Bacterial airborne contamination with an air-polishing device. Gen Dent 1988;36(6):496-9. 15. Worral SF, Knibbs PJ, Glenwright HD. Methods of reducing bacterial contamination of the atmosphere arising from use of an airpolisher. Br Dent J 1987;163:118-9.

20. 28. Larsen PE. The effects of a chlorhexidine rinse on the incidence of alveolar osteitis following the surgical removal of impacted mandibular third molars. J Oral Maxillofac Surg 1991;49:932-7. 29. Listerine antiseptic clinical review. Morris Plains, N.J.:Warner/Lambert Consumer Health Products Group; 1991. 30. Information on Listerine antiseptic. Data on file. Morris Plains, N.J.:Warner/Lambert Consumer Health Products Group; 1967. 23. Greene JC, Vermillion JR. Simplified oral hygiene index. JADA 1964;68(1):7-13. 24. Johnston JR, Butchart AM, Kgampphe SJ. A comparison of sampling methods for airborne bacteria. Environ Res 1978;15:279-84. 25. Moore DS, McCabe GP. Introduction to the practice of statistics. 2nd ed. New York: W.H. Freeman & Co.;1993:42-5. 26. Goldman HS, Hartman KS. Their disease, our unease: Infectious diseases and dental practice. Va Dent J 1986;63(2):10-9. 27. Lang NP, Brecx MC. Chlorhexidine digluconate-an agent for chemical plaque control and prevention of gingival inflammation. J Perio Res 1986;21(16)(Supplement):74-89

21. Feliz Natal e um Ótimo 2012!!! OBRIGADO!