Capítulo 2.

1. Capítulo 2. Técnica histológica y sus aplicaciones

2. Figura 2-1. Resalta en esta imagen las diferencias que la tinción de hematoxilina y eosina permite identificar: núcleos en morado y citoplasma en rosa (páncreas).

3. Figura 2-2. La técnica tricrómico de Massonidentifica el tejido conjuntivo (colágeno) en color azul, los núcleos en negro y la queratina en rojo (piel de axila).

4. Figura 2-3. En este corte de tendón, la técnica de tricrómicode Gallego tiñe al colágeno de verde y los núcleos en azul-negro.

5. Figura 2-4. La técnica de tricrómico de Gomori da el colágeno en verde-azul, los núcleos en azul o negro, las células β del páncreas, rosa y los eritrocitos en color naranja (páncreas).

6. Figura 2-5. Las fibras elásticas resaltan en color negro con la tinción de Verhoeff. En esta arteria elástica (aorta) es muy notoria su identificación en la capa media.

7. Figura 2-6. Con la tinción de Mallory el tejido conjuntivo se ilumina en tonos de azul, de igual manera que el cartílago (pulmón).

8. Figura 2-7. Cuando se aplica la técnica de Gros-Bielschowskyse observan los axones en negro-rojizo y las neurofibrillasen negro (nervio periférico).

9. Figura 2-8. La técnica Río-Hortega tiñe las neurofibrillasy cuerpos neuronales en negro (corteza cerebral).

10. Figura 2-9. Con la tinción de Grimelius, las células del sistema neuroendocrino difuso resaltan en color negro (intestino).

11. Figura 2-10. En esta imagen de corteza cerebral, las fibras nerviosas se ven negras y el resto en color café.

12. Figura 2-11. Con la técnica de Gordon-Sweet en hígado, las fibras reticulares se marcan en color negro.

13. Figura 2-12. La técnica con Luxol tiñe mielina en azul y cuerpos neuronales en rosa.

14. Figura 2-13. Con la técnica de Nissl los cuerpos neuronales y la mielina se tiñen de azul (médula espinal).

15. Figura 2-14. La técnica de Kluver Barrera muestra mielina en azul y las otras estructuras en rosa o morado (corteza cerebral).

16. Figura 2-15. La glándula sublingual marca en rosa las mucosustancias de sus ácinos mucosos.

17. Figura 2-16. Otra tinción para mucosustancias ácidas es la técnica de azul alciano pH 2.5, lo que es muy notorio en este corte de estómago.

18. Figura 2-17. Cuando el pH es de 1, las mucosustancias más sulfatadas se tiñen de azul (estómago).

19. Figura 2-18. Con la tinción de Wright, en la sangre se pueden identificar los leucocitos, como en esta imagen en la que se aprecia un linfocito y un eosinófi lo con sus gránulos rojizos.

20. Figura 2-19. Cuando se quiere identificar la presencia de hemosiderina se recurre al método de Perls, que la tiñe en azul (coágulo en la luz de un vaso).

21. Figura 2-20. En el caso de la melanina, la tinción de Fontana Massonla tiñe en negro, como es el caso del tejido aquí observado; los núcleos se tiñen de rojo (melanoma).

22. Figura 2-21. La lipofuscina en miocardio se identifica con facilidad utilizando la técnica de PAS, que la hace verrojo-magenta (corazón).

23. Figura 2-22. La belleza de los cromosomas en movimiento se identifica de forma maravillosa con la técnica de Feulgen (raíz de lirio).

24. Figura 2-23. A fin de identificar a los bacilos ácido-alcohol resistentes en el pulmón, se emplea la técnica de Ziehl-Neelsen que los tiñe de rojo (pulmón).

25. Figura 2-24. Para identificar hongos, la técnica de Grocott los resalta en color negro (pulmón).