580 likes | 945 Views
Nanoparticules et ‘quantum dots’. Développement des nanotechnologies. Confinement quantique. Modèle du puits de potentiel infini. E. d 2. h 2. H = -. Hamiltonien. V = ∞. V = ∞. 2m. d x 2. V = 0. e -. x. h 2 k 2. 0. L. E =. Fonction d’onde. 2m. 1. k = 2 p n/L.
E N D
Confinement quantique Modèle du puits de potentiel infini E d2 h2 H = - Hamiltonien V = ∞ V = ∞ 2m dx2 V = 0 e- x h2k2 0 L E = Fonction d’onde 2m 1 k = 2pn/L Y = eikx Énergie √L Zones de Brillouin k = np/a
électron libre k = 2pn/L périodicité k = np/a a L E = 2m zone de Brillouin 2 k2 h Niveaux d’énergie d’un semi-conducteur double quantification de l’énergie bande d’énergie bande interdite L >> a
n = N/2 + 1 n2 DE n = N/2 p2 p2 p2 E(N/2)+1 = En = 2 2 2 2m L2 L2 L2 h h h h2 E(N/2) = (N + 1) DE = 8mL2 (N/2 + 1)2 (N/2)2 2m 2m Energie LUMO = bande de conduction HOMO = bande de valence DE augmente quand L diminue Confinement quantique
Longue chaîne délocalisation le long de toute la chaîne la couleur dépend de la longueur de la chaîne Analogie avec une corde vibrante corde courte = note aiguë corde longue = note grave Ondes stationnaires Une seule condition, ne pas vibrer aux 2 extrémités
orbitales moléculaires bande d’énergie orbitale atomique Que se passe t’il quand L devient nanométrique ? Les états continus (bande) deviennent discrets
orbitales moléculaires bande d’énergie orbitale atomique Le gap augmente quand la taille diminue On peut contrôler les propriétés optiques d’un semi-conducteur en contrôlant sa taille
l d quand le diamètre des particules augmente le gap diminue l’absorption se déplace vers le rouge
Si 1,12 eV CdSe 1,59 eV 2,58 eV CdS Déplacement du gap vers les hautes énergies lorsque la taille diminue décalage de l’absorption et de l’émission vers le bleu
CdSe 3 nm 4 nm 5 nm Eg = 1,6 eV 3 nm 4 nm Nanoparticules de 5 nm 400 600 3 nm 4 nm 5 nm 500 700
spectres d’absorption spectres d’émission l l Evident Technologies ‘ EviDots ’ nanoparticules en suspension aqueuse
443 473 481 500 518 543 565 587 610 655 nm la lumière émise dépend de la dimension des nano-particules on peut couvrir toute la gamme optique de l’Infra-Rouge (CdTe, InAs) à l’Ultra-Violet (ZnSe)
fluorescence de CdSe-ZnS 470 480 520 560 594 620 nm la lumière émise dépend de la dimension des nano-particules B.O. Dabbousi et al. J. Phys.Chem. B, 101 (1997) 9463 des cristaux de tailles différentes donnent des émissions de couleurs différentes avec la même lumière excitatrice
Des cristaux de tailles différentes donnent des émissions de couleurs différentes avec la même lumière excitatrice d’où la possibilité d’émettre une lumière blanche Sandia 14.07.03 CdS de 3 tailles pour émettre rouge + vert + bleu dans une résine époxy excitation par LED proche UV
Synthèse des ‘ quantum dots ’ 1. Précipitation contrôlée de nano-cristaux CdS (UV- bleu) CdSe (visible) CdTe (rouge-infra-rouge) Confinement en milieu micellaire micelle micelle inverse Formes variées : sphères, cubes, cylindres, …..
transparent non émissif neutralité optique relation structurale (épitaxie) ZnS CdSe ZnS CdSe Synthèse des quantum dots protection ≠ agrégation 2. Revêtement ‘core-shell’
cœur : CdSe d ≈ 1-10 nm coquille : ZnS e ≈ 1-2 nm couche de ligands e ≈ 1 nm Synthèse des quantum dots chimique : solubilisation (SiO2, …) biologique : cible 3. Fonctionalisation 1,6 eV 3,8 eV
Nanoparticules stables en suspension aqueuse ‘ EviDots ’
Quantum dots Applications biologiques Bio-marqueurs
ZnS CdSe
Bio-molécules (protéine, oligonucléotide, …) greffées sur QD
Synthèse de nano-particules bio-compatibles dispersables dans l’eau Encapsulation des quantum dots au sein de micelles phospholipides-copolymères blocs n-poly-éthylène glycol (PEG) + phospholipide
ligands ADN CdSe ZnS Marquage de molécules biologiques Greffage sur ADN en remplaçant une partie des PEG-PE par des dérivés aminés ADN marqué Les QD encapsulés peuvent traverser les membranes cellulaires par endocytose Ils conservent leur propriétés de luminescence au sein de la cellule Les cellules continuent à se développer et à se diviser
même taille que les protéines Avantages des Quantum Dots par rapport aux fluorophores organiques (rhodamine) ou biologiques (GFP) 120 fois plus brillant - 100 fois plus stable - raies plus fines (1/30)
l d Des QD de tailles différentes donnent des couleurs différentes
Protéines fluorescentes Quantum dots 481 508 547 575 GFP + RFP Palette de couleurs variée
Marquage de cellules cancéreuses Greffage d’un marqueur (streptavidin) et d’anticorps spécifiques IgG sur les quantum dots cible = cellules cancéreuses du poumon excitation sous lampe UV (Hg) émission par quantum dot Microtubules colorés en vert par QdotTM 525-stretavidin Mitochondries colorées en rouge par QdotTM 605-treptavidin Noyaux colorés en bleu par un luminophore organique
Marquage ‘ code-barre ’ chaque QD est lié à une biomolécule spécifique grand nombre de combinaisons possibles avec 3 marqueurs
Raies plus fines Spectre d’absorption plus large Spectre d’émission plus fin Comparaison QD-rhodamine Meilleur rendement lumineux
525 ± 10 nm 655 ± 10 nm 565 ± 10 nm 605 ± 10 nm rouge vert Détection simultanée de cellules cancéreuses marquées avec 4 QD différents : 525, 565, 605, 655 nm Possibilité de marquer différents types de cellules avec filtrage
émission lumineuse intense Coupes de cellules rénales de souris colorées avec Chromophore organique Alexa 546-Sav Quantum dot 608-Sav
Les QD ont une durée de vie beaucoup plus longue que les fluorophores organiques La luminescence peut durer plusieurs heures au lieu de quelques minutes
Colorant organique luminescence verte Quantum dots luminescence rouge photostabilité et durée de vie après irradiation 3 mn avec une lampe Hg
CdSe/ZnS/SiO2 d= 2,8 nm l = 554 nm (vert) CdSe/ZnS/SiO2 d=4,1 nm l = 626 nm (rouge) 2 types de QD Bio-marqueurs dynamiques W.J. Parak et al. Advanced Materials, 14 (2002) 882 Berkely Les QD peuvent traverser les membranes cellulaires par endocytose ils conservent leur propriétés de luminescence dans la cellule Suivi du déplacement des cellules cancéreuse (métastases) les QD restent luminescent pendant plus d’une semaine les cellules continuent à croître et à se diviser
Microscopie confocale de fluorescence Les QD verts (8 nm) ont été ingérés par les cellules et stockés dans des vésicules Les QD sont répartis dans l’ensemble des vésicules et pas seulement à la surface
Le fluorophore organique (rouge) disparaît rapidement 5 mn Les QD (vert) demeurent fluorescents 16 mn Les QD (vésicules) se déplacent de la périphérie vers le noyau (v ≈ 0,1 mm/s)
In-vivo imaging of quantum dots B. Dubertret et al. Science, 298 (2002) 1759 Rockefeller University Suivi in-vivo du développement de l’embryon de grenouille (xenope) Via l’injection de QD dans l’oeuf
In-vivo imaging of quantum dots La fécondation entraîne une succession rapide de divisions cellulaires dans desquelles la cellule se clive pour générer un embryon constitué de milliers de petites cellules Au début , il n’y a pas de synthèse d ’ARN, c.a.d. pas de transcription de l’information génétique ni de synthèse de protéines, l’embryon vit avec les protéines et l’ARN maternels Après la 12ème division (≈ 4.000 cellules) l’embryon commence à fabriquer son propre ARN C’est à ce moment que les QD se concentrent autour du noyau
Les QD dispersés dans le cytoplasme de l’embryon se regroupent autour du noyau après environ 12 divisions marquant le début des processus de translocation