450 likes | 759 Views
„Wykorzystanie analiz DNA w celu identyfikacji osobniczej i populacyjnej u drzew leśnych". Jarosław Burczyk. Zakład Genetyki Instytut Biolog ii i Ochrony Środowiska Uniwersytet Kazimierza Wielkiego Bydgoszcz. Genetyka molekularna…. Specyfika drzew leśnych. - organizmy długowieczne
E N D
„Wykorzystanie analiz DNA w celu identyfikacji osobniczej i populacyjnej u drzew leśnych" Jarosław Burczyk Zakład Genetyki Instytut Biologii i Ochrony Środowiska Uniwersytet Kazimierza Wielkiego Bydgoszcz
Specyfika drzew leśnych - organizmy długowieczne - wysoki poziom heterozygotyczności - duża efektywna wielkość populacji naturalnych - intensywny przepływ genów - przewaga zapłodnienia krzyżowego
IDENTYFIKACJA • osobnicza • populacyjna • gatunkowa
Identyfikacja osobnicza Linia nierekombinacyjna • Genotyp haploidalny – genotyp haploidalny • Genotyp diploidalny – genotyp diploidalny Linia rekombinacyjna • Genotyp diploidalny – genotyp haploidalny • Genotyp diploidalny – genotyp diploidalny
Linia nierekombinacyjna Genotyp haploidalny – genotyp haploidalny A2B2C3 A2B1C3 A1B3C4 A2B1C2 A1B1C3 A2B1C3 Kto jest moim rodzicem? A2B2C3
Linia nierekombinacyjna A2B1C3 A2B1C3 A2B1C3 A1B2C3 A2B1C3 Kto jest moim dzieckiem? A2B1C3
Linia nierekombinacyjna Genotyp diploidalny – genotyp diploidalny A1A2B1B2 A1A1B1B1 A1A2B1B1 A2A2B1B1 A1A2B1B2 A2A2B2B2 A1A2B3B3
Linia rekombinacyjna Genotyp diploidalny – genotyp haploidalny A1A2B1B2 A1B1 A1B2 A2B1 A2B2 A2B3
Linia rekombinacyjna • Genotyp diploidalny – genotyp diploidalny A1A2B1B2 A1A1B1B1 A1A2B1B1 A2A2B1B1 A1A2B1B2 A2A2B2B2 A1A2B3B3
Do identyfikacji genetycznej potrzebne są markery - losowa reprezentacja genomu - etykiety genetyczne
Cechy dobrego markera - wysoki polimorfizm - kodominacyjny charakter dziedziczenia - neutralność - jednoznaczność określenia alleli - powtarzalność wyników - duża liczebność i równomierne rozmieszczenie w genomie - możliwości zautomatyzowania analiz - prostota i niskie koszty analiz (opracowania markera)
Markery genetyczne - Mikrosatelity (SSR) • tandemowe powtórzenia krótkich sekwencji (1-6 nukleotydów) • rozmieszczone w sekwencjach kodujących i nie kodujących genomu • większość mikrosatelitów wykorzystywanych w genetyce roślin to powtórzenia dwu-nukleotydowe (np: -CACACACACACACA-)
Podstawą analiz mikrosatelitarnych jest PCR - REAKCJA ŁAŃCUCHOWA POLIMERAZY-
Kilka prostych kroków analizy mikrosatelitów....
Analiza wielkości fragmentów DNA w automatycznym sekwenatorze
Zestaw markerów cpSSR dla sosny zwycajnej
Zalety mikrosatelitów • kodominacyjny charakter dziedziczenia • wysoki polimorfizm • powtarzalność wyników • możliwości zautomatyzowania analiz • znaczna liczebność markerów w genomie • równomierne rozmieszczenie w genomie • neutralność
Zastosowania mikrosatelitów • Przepływ genów • Systemy kojarzenia • Zróżnicowanie genetyczne • Mapowanie genomów • Identyfikacja osobnicza • Analizy rodzicielstwa
Analiza zmienności genetycznej drzewostanów, plantacji nasiennych i nasion, oraz ich przydatności w programach hodowli drzew. Genetyczna weryfikacja pochodzenia materiału rozmnożeniowego z konkretnych drzew (np. nasion lub zrazów z drzew doborowych). Analiza ‘czystości genetycznej’. Weryfikacja poprawności rozmieszczenia szczepów na plantacjach nasiennych oraz ocena zanieczyszczenia plantacji obcym pyłkiem. Identyfikacja odmian drzew i krzewów rozmnażanych wegetatywnie. Identyfikacja gatunkowa i osobnicza drzew i krzewów powodujących szkody budowlane (np. niszczenie ścian budynków przez korzenie) lub uszkodzenia infrastruktury podziemnej (szczególne rur kanalizacyjnych). Wskazanie konkretnego osobnika ułatwia uzyskanie zezwolenia organu administracji publicznej na usunięcie drzewa (krzewu) będącego przyczyną zniszczeń. Opracowanie na potrzeby certyfikowanych laboratoriów analiz sądowych wysoce wydajnych technik genotypowania drzew i krzewów umożliwiających zastosowanie ich w ekspertyzach sądowych, zlecanych przez Prokuraturę, Policję, czy osoby poszkodowane Wykorzystanie identyfikacji osobniczej
Fagus sylvatica cpDNA PCR-RFLP
Fagus sylvatica cpDNA cpSSR
FAIROAK: Różnorodność cpDNA u dębów 8 gatunkówdębów, 2673 populacji, 42 haplotypów
15 krajów EVOLTREE 25 partnerów 14.3 mln Euro INRA(Francja) Koordynator Alterra-WUR(Holandia) ARCS(Austria) BFH(Niemcy) CNR-IGV(Włochy) VIB(Belgia) GEUS(Dania) Gottingen Univ(Niemcy) IT(Francja) IPGRI(Włochy) NERC(Wlk. Brytania) PUM(Niemcy) WSL(Szwajcaria) TUZVO(Słowacja) TUM(Niemcy) INIA(Hiszpania) UNIUD(Włochy) CNRS(Francja) UPSC(Szwecja) UKW (Polska) UOULU(Finlandia) Soton(Wlk. Brytania) UWH(Węgry) UU(Szwecja) MPI-COE(Niemcy) Ponad 230naukowców 1/04/2006 - 31/03/2010
Genomika Ewolucja Genetyka Ekologia Reakcje na zmiany klimatu Dynamika różnorodności Procesy ekosystemowe Ochrona zasobów genowych
dziękuję za uwagę ... burczyk@ukw.edu.pl