1 / 17

Summer Research

Summer Research. 清華大學 生命科學系 04 級 孫敏瑜 891645. Introduction. 2002 年暑假我來到位於高雄的國立中山大學 - 卓忠隆老師的分子生物實驗室。卓老師讓我跟著他的得意門生 - 陳錦苡學長做一些簡單的分生實驗,以練習基本技術為主。錦苡學長的研究主題是 : 利用抑制性扣減雜交 (Suppressor Subtractive hybridization , SSH) 找出調控大鼠腦幹死亡過程的基因。

talen
Download Presentation

Summer Research

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript


  1. Summer Research 清華大學 生命科學系04級 孫敏瑜 891645

  2. Introduction • 2002年暑假我來到位於高雄的國立中山大學-卓忠隆老師的分子生物實驗室。卓老師讓我跟著他的得意門生-陳錦苡學長做一些簡單的分生實驗,以練習基本技術為主。錦苡學長的研究主題是:利用抑制性扣減雜交(Suppressor Subtractive hybridization,SSH)找出調控大鼠腦幹死亡過程的基因。 • 學長利用SSH建構了相關基因的cDNA library。而我所要做的就是將這些gene cloned,確定insert是正接或反接,然後送定序,可供後續研究用。 • 我總共cloned了兩個gene: GMF-β及s100。 • 原料:網狀腹外側核(rostral ventrolateral medulla(RVLM ))cDNA

  3. 實驗過程 • (1)以RVLM的cDNA ,加入欲clone gene的primer(f&r), 再加入Taq polymerase ,run PCR。 • (2)Run electrophoresis,check有產物。 • (3)使用kit來purify PCR product。 • (4)以分光光度計來測量DNA的濃度及純度。 • (5)Run electrophoresis,與marker對照確定是我要的DNA片段。 • (6)將這些純化的產物保存在-200C 冰箱。

  4. 實驗過程 • (7)接下來要準備transformation了,所以我要自己製作agar plate(with amp & w/o amp) 還有自己製作competent cell (來源: e.coli JM-109) 。 • (8)Ligation: 將純化的PCR產物與本實驗所用的pGEM T easy vector進行ligation 。 • (9)Transformation • (10)從plate上挑菌(藍白篩選法)挑白色菌,種到含有LB medium的試管中,培養16-20hr。 • (11)隔日,抽plasmid ,以EcoR I切3hr,再以electrophoresis確定是否有成功insert。

  5. 實驗過程 • (12)成功insert的那幾管菌,再重新培養到新的試管中。 • (13)以kit 抽plasmid ,此時抽出的plasmid較純,送定序check是正接or反接。 • (14)本來想利用insert上的restriction enzyme切位與vector上的切位,使用適當的restriction enzyme來切,可判斷是正接或反接。但上網查了一下GMF-B及s100上的切位,發現所需要的enzyme實驗室沒有。所以還是送定序來確定是正接或反接(因為兩者的序列可在網上查到) 。

  6. 實驗流程

  7. 實驗結果 • 1.GMF-β • (1)PCR產物由電泳圖來看量還算夠

  8. 實驗結果 • (2)Transformation效率不高,可能是我做的competent cell效率不夠強,或是ligation效果不夠好。 • (3)restriction enzyme切割結果:

  9. 實驗結果 • 大部分都有成功insert ,我從這些成功的insert中挑了四管,再純化plasmid 。 • (4)送定序 • (5)定序結果:四個recombined plasmid都是正接的

  10. 定序圖

  11. 實驗結果 2. s100 • (1)PCR產物由電泳圖來看量還算夠

  12. 實驗結果 • (2)Transformation效率不高,可能是我做的competent cell效率不夠強,或是ligation效果不夠好。 • (3)restriction enzyme切割結果:

  13. 實驗結果 • 相當奇怪!!切出的片段有的不一樣長,只好將plasmid再做一次PCR ,確定有insert到正確片段(學長教的) 。

  14. 實驗結果 • 由圖看no.3是錯的,no.1有兩條band也怪怪的,所以只有2.4.5.6比較有可能成功。學長說no.1的情形可能是最初PCR時,溫度沒有設好,所以primer不專一的接到別的片段,所以純化時也連這些片段一起純化。 ligation後產生兩種recombined DNA ,使transformation後有兩種菌產生:含有S100 及另一種insert的菌。為了確定,我又重挑了四管菌:no9-12 。

  15. 實驗結果 • 抽plasmid切割後,與之前的no.2切割片段及plasmid PCR產物比較,發現竟然不一樣長…可見果然有insert到錯誤的DNA片段

  16. 實驗結果 • 因為後來純化plasmid的kit沒了,而且暑假也結束了,所以來不及將s100送定序--交給其他學長姐完成。

  17. 感想 這是我第一次進入實驗室做實驗,覺得非常新鮮又滿 興奮的。想到那些課本上描述的神奇實驗,如今我可 以親自動手操作,就覺得很有成就感。這一次我的重 心是放在基本操作的練習上,一整個暑假幾乎就是反 覆的PCR.抽plasmid.電泳…. 。以後等我學習了生化、 分生,更有基礎之後,我很期待可以開始真正的研究。

More Related