460 likes | 638 Views
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002 Cell Motility - Microtubules and Intermediate Filaments - Kap. 19. Tor-Henning Iversen Plantebiosenteret, Biologisk Institutt, NTNU, 7491 Trondheim PBS`hjemmeside :www.plantebiosenteret.no
E N D
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002 Cell Motility - Microtubules and Intermediate Filaments - Kap. 19 Tor-Henning Iversen Plantebiosenteret, Biologisk Institutt, NTNU, 7491 Trondheim • PBS`hjemmeside :www.plantebiosenteret.no • e-mail : Tor-Henning.Iversen@chembio.ntnu.no
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Emner som gjennomgåes Innledning • Mikrotubuli (Del 19.1) : • Mikrotubuli struktur - tubulin • Mikrotubuli - dynamikk og assosierte proteiner (Del 19.2) : • Mikrotubuli - organisering av oppbyggingen av mikrotubuli • Forbindelser som påvirker mikrotubuli-dynamikken • Kinesin, dynein og intracellulær transport (Del 19.3) : • Mikrotubuli - et spor for vesikel- og organell-transport ? • Kinesin og dynein - mikrotubuli motor proteiner • Cilier og flageller (Del 19.4) : • Struktur og bevegelse - mikrotubuli • Dynenin
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Emner som gjennomgåes • Mikrotubuli - dynamikk og motorproteiner i mitose (Del 19.5) Mikrotubuli maskin og kromosom-separasjon Kinetochore - kromosom-sentromer Spindelfunksjon Kromosom-bevegelse Anafase Cytokinese Plantecellevegg • Intermediære filamenter (IF) (Del 19.6) Struktur og funksjon av IF IF proteiner og organisering i filamenter IF som dynamiske polymere IF og kobling til andre cellestrukturer IF - membraner, cell junctions, sarcomerer og keratin
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Innledning • Mikrofilamenter som er den minste typen av cytoskjellettfibre, er gjennomgått i Kap. 18. • Kap. 19 tar for seg Mikrotubuli og Intermediære filamenter (IF) som er viktige for bevegelse og form hos cellen - begge er lange protein-polymere • Lokalisert i cytosol - mellom kjerne og cellemembran • I en overordnet sammenheng så er : • Mikrotubuli - ansvarlig for cellebevegelse gjennom polymerisering/depolymerisering (cilier, flageller, transport av vesikler, kromosomforflytning, bevegelse av nervecelle-axoner) • IF - kun strukturell funksjon
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli Mikrotubuli struktur - tubulin • Mikrotubuli er en polymer av globulære tubulin-underenheter arrangert i et sylindrisk rør • Byggeblokker er - og - tubulin i en heterodimer (også en tredje form - -tubulin deltar under polymeriseringen ). GTP deltar ved irreversibel og reversibel binding på to seter til - og - tubulin. I - tubulin-setet hydrolyseres GTP --> GDP. Dette er et utbyttbart sete hvor GDP kan erstattes av GTP. Den fysiske lokalisering er vist på Figure 19-2. • Den tubulære form opprettholdes gjennom laterale og longitudinelle interaksjoner mellom tubulin-underenhetene. Det longitudinelle protofilament er lateralt assosiert gjennom sylindre til et enkelt (singlet) rør - dvs. en mikrotubulus (Figure 19-2b).
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli (forts.) Mikrotubuli struktur - tubulin • Hver mikrotubulus består vanligvis av 13 protofilamenter - kan også være dubletter (f.eks. i cilier) og tripletter (f.eks. i sentrioler) av rørene (Figure 19-3). Mikrotubuli har også en (+) og (-) ende. Figure 19-3
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli (forts.) Mikrotubuli struktur - tubulin • Mikrotubuli kan være både lang- og kortlivet. De siste (ustabile ) deltar i mitosen - de langlivete finnes i ikke-replikerende celler mens f.eks. neuroner - som gjennomfører lange prosesser kalt axoner- har en indre kjerne av stabile mikrotubuli av fundamental betydning (Figure 19-4b). Figure 19-4 a. lange fibre av mikrotubuli i interfase og som spindelfibre under mitose (insert)
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli (forts.) • Mikrotubuli - organisering av oppbyggingen av mikrotubuli • I interfase vil cytosol struktureres av et hjul med eiker (spoke) i et mønster hvor eikene (dvs. mikrotubuli) går ut fra et sentralt sete (gult; Fig. 19-5a) kalt en sentrosom (i dyreceller) eller generelt et mikrotubuli-organiserende senter (MTOC=MT ; Figure 19-5b). I dyr (men ikke planter og sopp) kan man finne et par sentrioler (C;Figure 19-5b). Figure 19-5
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli (forts.) • Mikrotubuli - organisering av oppbyggingen av mikrotubuli • Depolymerisering av mikrotubuli kan skje eksperimentelt ved endringer i temperatur (0o-37oC) eller ved bruk av f.eks. colcemid. Når dette fjernes deltar sentrosomen i en repolymerisering av mikrotubuli (Figure 19-6). • Nedbygging og påleiring skjer ved (+)-enden av mikrotubuli. Figure 19-6
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli (forts.) • Mikrotubuli - organisering av oppbyggingen av mikrotubuli • MTOC som er nær (-)-enden av mikrotubuli, er ansvarlig for organisering og derved polariseringen av de cellulære mikrotubuli i ulike celler og cellefaser (Figure 19-7). Figure 19-7: b; MTOC = polene c: i nervecellen er (-)enden nær basis av axonet d; i planteceller som har mange MTOC er mikrotubuli kortikulære
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli (forts.) • Mikrotubuli - organisering av oppbyggingen av mikrotubuli • I organiseringen (assembley) og polymeriseringen av mikrotubuli underenheter deltar også proteinet -tubulin (Figure 19-8 b). Figure 19-8 b
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og assosierte proteiner (Del 19.2) Hvordan skjer assembley, disassembley og polarisering av mikrotubuli ? • Mikrotubuli samles ved polymerisering av / - tubulin-dimerene. Dette skjer primært ved (+)-enden. Etter samlingen er mikrotubuli-stabiliteten temperatur- og konsentrasjons- avhengig (Figure 19-9). Den kritiske konsentrasjonen (Cc) er hvor dimere / - tubulin er i likevekt med mikrotubuli. Figure 19-9
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og assosierte proteiner (Del 19.2) Hvordan skjer assembley, disassembley og polarisering av mikrotubuli ? (forts.) • Mikrotubuli samlingen omfatter tre trinn : 1. Dannelse av protofilamenter fra / -underenheter, 2. Assosisering av protofilamentene til å danne vegg i mikrotubuli og 3. Forlengelse av protofilamentene ved påføring av nye underenheter (Figure 19-11). Figure 19-11
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og assosierte proteiner (Del 19.2) Forbindelser som påvirker mikrotubuli-dynamikken • Dynamisk ustabilitet er en fremtredende egenskap ved mikrotubuli (se Figure 19-13) - påvist både in vitro og in vivo. Vekst og reduksjon i lengde av mikrotubuli kan følges på video. • Over og under den kritiske konsentrasjonen (Cc) gir resp. vekst og reduksjon av den totale masse av mikrotubuli.Reduksjonen(disassembly) skjer raskere enn veksten (assembly) (Figure 19-13). • Under in vitro-betingelser følger også veksten av mikrotubuli ”tredemølle”-prinsippet - sml. actin-filamenter (Figure 18-13c). Figure 19-13
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og assosierte proteiner (Del 19.2) Forbindelser som påvirker mikrotubuli-dynamikken • Lokalisering av GTP eller GDP på det utbyttbare setet på - tubulin ved (+) enden påvirker også stabiliteten til mikrotubuli (Figure 19-15). • Mikrotubuli med (+)-enden forbundet med GTP-tubulin (GTP cap) er stabile og vokser raskt mens de med GDP-tubulin (GDP cap) er ustabile og blir hurtig depolymerisert. • Drugs som påvirker stabiliteten av mikrotubuli (og spesifikt kun mitosen) er plantestoffene colchicine, taxol og vinblastine - alle isolert fra planter. Bruk av colchicine - og colcemid - blokkerer metafase. Taxol påvirker forlengelse/avkorting og vinblastine blokkerer ved å danne vinblastine parakrystaller. Om medisinsk betydning - se boken. Figure 19-15
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og assosierte proteiner (forts.) Mikrotubuli -assosierte proteiner (MAP) • Mikrotubuli-assosierte proteiner er blitt isolert sammen med tubuliner. • De såkalte assembley-MAPs som er ansvarlig for kryss-binding av mikrotubuli i cytosol, er organisert i to domains. De ulike grupper av MAPs er presentert i Table 19-1. For detaljer i funksjon og struktur av disse vises til tabellen og teksten i boken. • Når MAP dekker den ytre veggen av et mikrotubulus er tubulin-underenhetene ikke istand til å til å dissosiere fra endene av mikrotubuli dvs. MAP hindrer cytosoliske mikrotubuli fra å depolymerisere. • Lengden av mikrotubuli kontrolleres ved modulering av bindingen av MAP. Sentralt i dette er fosforylering av MAP. • To enzymer - MAP-kinase som er viktig i fosforyleringen av MAP - og cdc2 kinase, har stor betydning i celle signalisering og kontroll (Kap. 20) av cellesyklus (Kap. 13).
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Kinesin, dynein og intracellulær transport (Del 19.3) Mikrotubuli - et spor for vesikel- og organell-transport ? • Vesikler og proteiner transporteres inne i cellen langs mikrotubuli-spor • Et meget konkret eksempel er den axonale transport . Hastighet og formen på denne transporten kan bestemmes ved puls-radioaktivitetsforsøk (Figure 19-19). Den axonale transport skjer i begge retninger ; anterograde transport fra cell-body til de synaptiske junctions (forbundet med axonal vekst og nydannelse av synaptiske vesikler) og retrograde transport mot cell-body (forbundet med membranrester fra vesikler som skal til lysosomer) . • I forsøket (Figure 19-19) transporteres de rødfargete proteiner raskest. Figure 19-19
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Kinesin, dynein og intracellulær transport (Del 19.3) Mikrotubuli - et spor for vesikel- og organell-transport ? • Også i melanoforer dvs. spesialiserte pigmentceller som amfibier og fisk bruker for å endre farge, skjer transporten av pigment-kornene langs mikrotubuli-spor. • Mest alment kjent er transporten av Golgi-vesikler og det at ER-membraner bindes med bestemte proteiner til mikrotubuli og at membranene synes å forlenges langs slike spor. Begge systemer er tett koblet opp mot MTOC.
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Kinesin, dynein og intracellulær transport Kinesin og dynein - mikrotubuli motor proteiner • For å avklare de axonale mekanismer er det undersøkt i in vitro-forsøk hvilke proteiner som kan fremme transporten av synaptiske vesikler langs mikrotubuli. • Ved eksperimentelt bruk av vesikler, nerve cytosol, AMPPNP (analog til ATP) og ATP ble det påvist at kinesin er et motor-protein som transporterer vesikler, proteiner og organeller langs mikrotubuli. • Strukturen av kinesin er vist i Figure 19-23 ; tre domains - to tunge kjeder (hode), et langt -helix nakke-område og to lette kjeder ( hale) . Respektive oppgaver ; 1. Hode: ATP-hydrolyse + binding av mikrotubuli (ansvarlig for motor-aktiviteten) og 2. Hale : binding til vesikler (cargo). Figure 19-23
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Kinesin, dynein og intracellulær transport Kinesin og dynein - mikrotubuli motor proteiner • Kinesin ligner strukturelt Ras (guanin-nukleotid-bindingsprotein) og har også likheter med myosin-motor-domain - viser felles opphav. • Kinesin-motor transport er anterograde dvs. transporterer vesikler fra (-) til (+) enden på et mikrotubuli (Figure 19-24). • Kinesin tilhører en familie (12 medlemmer) av beslektede motor-proteiner men med bl.a. forskjell i hale-domain. Kinesin kan også deles i to funksjonelle grupper - cytosolisk- og spindel-kinesin - avhengig av cargo (se oversikt i Table 19-2). Figure 19-24
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Kinesin, dynein og intracellulær transport Kinesin og dynein - mikrotubuli motor proteiner (forts.) • Dynein tilhører en annen gruppe av ekstra store motor-proteiner, men med transportretning motsatt (retrograde) av kinesin - dvs. mot (-)enden av mikrotubuli. • Dynein er delt i to funksjonelle klasser (Table 19-2); cytosolisk (vesikler og kromosomer) og axonemal (cilia og flageller).
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Kinesin, dynein og intracellulær transport Kinesin og dynein - mikrotubuli motor proteiner (forts.) • Strukturelt ligner dynein kinesin pga de to hoder (Figure 19-25). Men - dynein (orange) kan ikke fremme transport uten hjelp av komplekser av mikrotubuli-bindingsproteiner (MBP, grønne). Best karakterisert er dynactin med 8 underenheter bl.a. dynamatin, actin-capping protein Arp 1 og Glued. • Arp 1-underenheten i dynactin er forbundet med spectrin som ligger under cellemembranen. Figure 19-25
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Kinesin, dynein og intracellulær transport Kinesin og dynein - mikrotubuli motor proteiner (forts.) • I Figure 19-26 er vist en generell - men forenklet modell - for kinesin-(anterograde) og dynein-(retrograde) fremmet transport i cellen.Retningen av vesikeltransporten er også avhengig av orienteringen av mikrotubuli som er bundet av MTOC. Figure 19-26
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Cilier og flageller - struktur og bevegelse (Del 19.4) Struktur og bevegelse - betydning av mikrotubuli • Bølgebevegelsen er karakteristisk for cilier (korte) og flageller (lange) - de siste illustrert i Figure 19-27 med bevegelse mot venstre av en sædcelle (a) og Chlamydomonas (b). • Merk at bøyningen presser på omgivende medium og presser cellen forover eller beveger væske langs et fiksert epitel. • Merk også forskjellen hos de to flageller hos Chlamydomonas mellom de to faser ; effective (de tre øverste rammer)og recovery stroke. Figure 19-27
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Cilier og flageller - struktur og bevegelse (Del 19.4) Struktur og bevegelse - betydning av mikrotubuli • Axonem er den sentrale samling av mikrotubuli i et ”9 + 2” mønster (Figure 19-28) avgrenset av en plasmamembran. Hver dublett mikrotubulus inneholder A og B -rør forsterket med proteinet tektin. Forøvrig finnes 13 og 10 protofilamenter (se Figure 19-3) med dynein-armer, nexinbinding, inner sheat og radielle eiker (spoke) med hode på. Figure 19-28
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Cilier og flageller - struktur og bevegelse (Del 19.4) Struktur og bevegelse - betydning av mikrotubuli • Axonemet er festet til et basal-legeme (BB; Figure 19-29) som hver består av ni triplett-mikrotubuli(Figure 19-3). • Biokjemiske og genetiske studier av Chlamydomonas reinhardtii og mutanter av denne har gitt mye kunnskap om flageller. • Axonem- bevegelsen er en gliding av protein-filamenter relativt til hverandre. Her spiller dynein en sentral rolle. Figure 19-29 Figure 19-3
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Cilier og flageller - struktur og bevegelse Betydning av dynenin • Mekanismene for dynein-fremmet gliding av de axonemale ytre dublett-mikrotubuli er vist i Figure 19-31 og 19-32. • Sentrale elementer i bevegelsen er : • Dynenin er flerhodete motor-proteiner • Kraften som kreves for aktiv gliding kommer fra ATP • Cilier og flageller har en aktiv ATPase som er forbundet med dynein-armene • Binding og hydrolyse av ATP medfører at dynein-armene suksessivt frigjøres fra og bindes til nærliggende dublett • Glidingen (lineær) skjer relativt mellom dublett A og B subfiberen og mot (-)-basis av B • Axonemalt dynein består strukturelt av basis og hode, basis er festet til A-delen og hodet til B-delen, ATP hydrolyseres i A-delen, ATP bindes til hodet. Figure 19-32 Figure 19-31
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Cilier og flageller - struktur og bevegelse Betydning av dynenin • Bøyningen i cilier og flageller dannes i områder hvor gliding og motstand mot gliding forekommer. Kontrollen av bøyningen har sin basis i respektiv bøyning i to halvdeler av dynenin-armen. • De radielle eiker (spokes), de to sentrale mikrotubuli og indre-arm dyneiner (Figure 19-28) spille en viktig rolle i flagell-bøyningen. • Dynamikk, oppbygging og stabilitet i axenomale mikrotubuli er vist i fusjonsforsøk med Chlamydomonas (Figure 19-33).Etter sammensmelting gjendannes de amputerte flageller med tubulin-underenheter fra begge foreldre-cellene (rød/svart) - vist med antistoff-merking (Figure 19-33b). Figure 19-33
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og motorproteiner i mitose (Del 19.5) Mikrotubuli maskin og kromosom-separasjon • Regulering av cellesyklus - herunder mitose - ble gjennomgått i Kap. 13. De fire hovedtrinn (profase, metafase, anafase og telofase) er vist i Figure 19-34. Det mitotiske apparatet - dannet av mikrotubuli - endres kontinuerlig under mitose med den primære oppgave å separere kromosomene. Figure 19-34
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og motorproteiner i mitose (Del 19.5) Mikrotubuli maskin og kromosom-separasjon • I metafase er det mitotiske apparatet en kort tid statisk og organisert i to deler ; 1. En mitotisk spindel (bilateral, symmetrisk samling av mikrotubuli) og 2. Et par med asters (dannet av astrale mikrotubuli) (Figure 19-36). • I hver halvdel av spindelen organiserer en sentrosom tre sett av mikrotubuli; 1. Astrale mikrotubuli, 2. Kinetochore mikrotubuli og 3. Polare mikrotubuli. Spindelen utgjøres av kinetochore og polare mikrotubuli. • Organiseringen i gjærceller avviker noe fra overnevnte. Planteceller mangler synlig sentriole (Figure 19-5b). Figure 19-36
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og motorproteiner i mitose (forts) Kinetochore - kromosom-sentromer • Søster-kromatidene i metafase-kromsomene transporteres til hver pol langs kinetochore mikrotubuli. Kinetochoren (Figure 19-39) observeres først i sen profase men før etableringen av det mitotiske apparatet. • Kinetochoren ligger i sentromeren som er høyst spesialisert område av kromosomet hvor søster-kromatidene ligger tettest. Lokaliseringen av kinetochoren og dermed sentromeren er direkte kontrollert av en spesifikk sekvens av kromosomalt DNA kalt sentromerisk (CEN) DNA. CBF er mikrotubuli-bindingsproteiner som medvirker til å feste enkle mikrotubuli til sentromeren.Andre mikrotubuli-bindingsproteiner danner resten av kinetochoren. Figure 19-39
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og motorproteiner i mitose (forts) Kinetochore - kromosom-sentromer • CEN DNA er organisert i tre regioner kalt CDE I-III (Figure 9-41) eller sentromer DNA-elementer I, II og III. Den siste er viktigst for sentromer-funksjonen og samvirker med en sentromer-bindingsfaktor (CBF3) - Figure 19-39. • Et par sentrioler (røde) i sentrosomen skal dupliseres i mitosen og beveges mot polen. Prosessen kalt sentriole-syklus (eller sentrosom-syklus) starter i G1-fasen (Figure 19-40). • Høy omsetning av tubulin i mikrotubuli under mitosen viser betydningen av mikrotubuli-dynamikk i mitosen (Figure 19-41). Levetiden for mikrotubuli går ned fra 10 min i interfase til 30 sek i mitotisk spindel dvs. raskere organisering/deorganisering. Figure 19-40 Figure 19-41
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og motorproteiner i mitose (forts.) Kinetochore - kromosom-sentromer (forts.) Spindelfunksjon • Kinsein-relaterte proteiner (KRP) eller spindel-kinesiner deltar i bevegelsen av sentrosomen og dermed i organiseringen av spindel og spindel-aster. I tillegg virker cytosolisk dynein i sentrosom-bevegelsen og spindel-orienteringen (Figure 19-42). Figure 19-42
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og motorproteiner i mitose (forts.) Kinetochore - kromosom-sentromer (forts.) Spindelfunksjon • Spindel merket med antistoffer mot tubulin (grønne) og dynenin (røde) - Figure 19-43a • KRP, dynein og NuMA (nukleær-mitotisk apparat) kryssbinder (-)enden av spindel-mikrotubuli i dannelsen av spindel-polen koblet mot sentrosomen (Figure 19-43b). Figure 19-43
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og motorproteiner i mitose (forts.) Kinetochore - kromosom-sentromer(forts.) -Spindelfunksjon • Hurtige fluktuasjoner i lengden av (+)enden av mikrotubuli, brukes for å fange opp kromsomene i kinetochoren under profase mens kjernemembranen brytes ned (Figure 19-44). • Figure 19-44: (a) noen mikrotubuli vokser i (+)-enden, andre skrumper inn,(b)I sen profase samvirker enden av mikrotubuli med kinetochoren og stabiliseres, (c) noen mikrotubuli bommer på kinetochoren men denne bindes til siden og glir mot (+)-enden. Figure 19-44
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og motorproteiner i mitose (forts.) Kinetochore - kromosom-sentromer (forts.)- Kromosom-bevegelse • Kromsomene bundet til kinetochor-mikrotubuli beveger seg ved ”hoppende” (=saltatory) bevegelser på veien mot ekvator av spindelen. Før alle mikrotubuli er bundet til kinetochorer vil ikke anafase inntre. • Det er tenkt alternative mekanismer for hvordan samlingen av kromosomene i ekvator skjer. Dette omfatter bl.a. polymerisering og depolymerisering av tubulin-underenheter, CENP-E og dynein (Figure 19-45) Figure 19-45
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og motorproteiner i mitose (forts) Figure 19-46 Anafase • De samme krefter som virker veddannelsen av spindelen i pro- og metafase, er også med å trekke kromosomene mot de motsatte poler i anafase. Denne deles i tidlig (Anafase A) og sen (Anafase B) anafase. • Ved at mikrotubuli forkortes gjennom depolymerisering fra (+)enden i Anafase A vil kromosomene forflyttes mot (-)enden og derved mot polene (Figure 19-46). • I Anafase B vil spindelen forlenges ved påleiring av tubulin til (+)enden av de polare mikrotubuli (Figure 19-47). Figure 19-47
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og motorproteiner i mitose (forts) Figure 19-34 Cytokinese • Når kromosomene er kommet til polene, gjendannes kjernemembranen rundt kromosomene og cellen deles (cytokinese - Figure 19-34). • Delingsplanet og delingsfuren bestemmes ikke av spindelen selv men av to asters (Figure 19-48) som sender signaler som aktiverer actin og myosin med påfølgende dannelse av delingsfuren. Figure 19-48
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Mikrotubuli - dynamikk og motorproteiner i mitose (forts) Plantecellevegg I planteceller dannes i cytokinesen en fragmoplast (--> celleplate) fra Golgi-vesikler. I gjendannelsen av celleveggen deltar kortikulære mikrotubuli (cMT) - Figure 19-49. Figure 19-49
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Intermediære filamenter (IF) - Del 19.6 Struktur og funksjon av IF • IF er det tredje settet av cytoskjellett-fibre i eukaryote celler (Figure 19-50) : mikrofilamenter, mikrotubuli og IF) • IF`s primære funksjon er struktur-styrking av cellen og organisering til vev. I hår og klover er IF-proteiner i sin mest ekstreme funksjon. • Forskjell fra mikrofilamenter og mikrotubuli ; IF deltar ikke i bevegelser, er ekstremt stabile (tåler detergenter, salter, urea), mellom-størrelse, alfa-heliks som samles i taulignende filamenter, krever ikke GTP/ATP, bindes ikke til nukleotider. Figure 19-50
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Intermediære filamenter (IF) - Del 19.6 Struktur og funksjon av IF • .IF-proteiner er klassifisert i 6 typer (Table 19-3) av stor variasjon og MW ; • Sure og basiske keratiner (Type I og II) i ”harde” epitelceller (negler etc.) og cytokeratiner • Vimentin (leukocytter,fibroblaster m.fl.), desmin (muskelceller), glial-sure proteiner (GFAP; filamenter i glial-celler omkring neuroner og ascocyter) og peripheriner (neuroner i perifert nervesystem) - Type III IF • Neurofilamenter (NFs) i neuronale axoner - Type IV polypeptider. Ansvarlig for radiell vekst (diameter) av et axon dvs. bestemmer hastigheten av ledningsimpulsen. • Laminer -Type V IF proteiner - i kjernen • Kunnskap om IF proteiner brukes i kreftdiagnostisering og behandling. Tumorceller uttrykker de IF proteiner den opprinnelige normale cellen hadde og man kan diagnostisere celletypen på basis av spesifikke MAbs.
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Intermediære filamenter (IF) - forts. IF proteiner og organisering i filamenter • Felles domain-struktur : -helix-kjerne flankert av globulære N- og C-terminale domains (Figure 19-51, øverst) separert av 4 spacers (ikke-helixer). • To monomerer danner en parallel dimer med hode (NH-grupper) og hale (COOH-gruppe) som videre danner antiparallele tetramerer som bindes sammen ende til ende og danner underenheten (protofilamentet) i IF. • Protofilamenter parres sammen til protofibriller - fire av disse danner et enkelt IF. • Ulike IF proteiner kan danne både homopolymere og heterodimere filamenter. Figure 19-51
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Intermediære filamenter (IF) - forts. IF som dynamiske polymere • Man diskuterer fortsatt om tetrameren er grunnenheten for organisering av IF. • Eksperimenter med bl.a. biotin-merket Type 1 keratin i tidstudier (Figure 19-53) og FRAP-teknikk (Figure 5-36) har vist at IF-proteiner kan erstatte IF-cytoskjelletet. IF-underenheter fra en løselig pool i cellen vil derfor påleires og avsnøres fra intakte IF. • Det er viktig for cellen å ha et dynamisk system av IF - spesielt i mitotiske celler hvor bl.a. filamenter av vimentin, desmin og laminer nedbygges tidlig og reorganiseres etter celledelingen. • I dette dynamiske systemet deltar kinaser (cdc2-kinase) og fosfataser. Figure 19-53
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Intermediære filamenter (IF) IF og kobling til andre cellestrukturer • IF-assosierte proteiner (IFAPs) kryssbinder IF til hverandre og danner en samling (tonofilament) eller et nettverk som også er bundet til andre cellestrukturer.Kun noen få IFAP er identifisert. • En forutsetning for den fysiske bindingen mellom IF og mikrotubuli er tilstedeværelse av sammenbindende proteiner (IFAP) og mikrotubuli. • Et slikt IFAP er påvist - kalt plectin. Dette kan også samvirke med andre cytoskjellett-proteiner (f.eks. spectrin), MAPs og lamin B. • På Figure 19-54 demonstreres immuno-gullmerket MAbs til plectin som viser de tynne plectin-forbindelser mellom mikrotubuli og vimentin. Figure 19-54
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Intermediære filamenter (IF) IF - membraner, cell junctions, sarcomerer og keratin • Et nettverk av IF danner en mekanisk støtte for cellulære membraner - f.eks. kjerne-lamina. • Epitel-celler i organer i kroppen og i huden holdes sammen av IF i spesialiserte cell junctions (se Figure 19-56 )kalt desmosomer (blå; celle-celle-tiltrekning) og hemidesmosomer (grå; binding til underliggende membraner) . Bindingene som IF her representerer er med å gi mekanisk støtte til hele cellen. Figure 19-56
Forelesninger i BI 316 - Cellebiologi III - 8. oktober 2002Intermediære filamenter (IF) IF - membraner, cell junctions, sarcomerer og keratin (forts.) • IF av Type III - desmin - omgir sarcomeren i muskelceller (Figure 19-57). Desmin filamentene er kryssbundet til plasmamembranen av flere typer IFAP. • I lengderetningen finnes også desmin-filamenter som holder sammen Z-skiver innen og mellom myofibriller. Desmin deltar ikke i kontraktile bevegelser i muskelen. • I epidermis som bl.a. hindrer vanntap, er bunter av keratin kryssbundet av filaggrin (en IAFP) og forankret i endene til desmosomer. • Alvorlige degenerative sykdommer i huden, muskler og neuroner forårsakes av nedbrytning av IF cytoskjellettet eller dets forbindelser til andre cellestrukturer.