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8. Automatisation de l'hémogramme La chronologie par étapes
11. Deux principes très différents:
12. La variation d'impédancePrincipe Coulter
13. Construction des histogrammes de distribution volumétrique: 1-amplification des impulsions (µV en mV)2-tri des impulsions selon des seuils électroniques3-Répartition des impulsions dans des canaux électroniques (256 ou 128) en fonction du niveau d’impulsion donc du volume cellulaire 4-comptage des impulsions dans un intervalle de volume cellulaire
14. Numération des Globules Rouges et des Plaquettes Bac de comptage des GR/PLT Comptage et mesure du volume à partir d'une suspension cellulaire diluée en solution isotonique: taux de dilution élevé (1/10 000 à 1/20 000 ), ce qui permet de rendre négligeable une interférence des GB
Un seul bac de comptage:
Toute particule d'un volume supérieur à 25 fl (et inférieur à 250 fl) est comptée comme un GR
Toute particule d’un volume supérieur à 2 fl (et inférieur à 25 fl) est comptée comme une PLT
Chaque particule est placée dans un histogramme de distribution volumétrique
15. Numération des Globules Rouges Histogramme des GR Mise en évidence de fragments de cytoplasme ou de grandes plaquettes par l'analyse de l'histogramme à partir de 24 fl.
16. Numération des Globules Rouges Les paramètres calculés L'IDR ou RDW (Red Cell Distribution Width)
L'IDR est une valeur statistique correspondant au CV % calculé sur la distribution des rouges = coefficient d'anisocytose.
17. Numération des Plaquettes Histogramme des PLT et paramètres calculés
18. Numération PLT Existent des seuils variablespermettant élimination risques d’interférences et numérations justes
19. Numération des globules blancs Bac de comptage des GB Comptage à partir d'une suspension cellulaire diluée en liquide hémolytique: taux de dilution faible, (1/200 à 1/300)
Un bac de comptage réservé
Toute particule d'un volume supérieur à 35 fl est comptée comme un globule blanc.
Les globules rouges sont lysés (ammonium quaternaire, ferri cyanure, cyanure de K+), permet la libération de Hb CyanMetHb
Une partie de la dilution des leucocytes passe dans une cuve spectrophotométrique pour la mesure à 540 nm
20. Le résultat de numération est assujeti à une correction dite "correction de coïncidence".
Occasionnellement deux ou trois cellules peuvent traverser l'orifice de comptage en même temps.
Une impulsion de grande amplitude est générée.
La fréquence de ces passages en coïncidence est statistiquement prévisible en fonction du nombre de cellules. Cette correction est réalisée automatiquement par les analyseurs. Correction de passage en coïncidence Doublet ou triplet cellulaires
21. LA FORMULE LEUCOCYTAIRE automatiséeTROIS POPULATIONS ou CINQ POPULATIONS (5 Diff)
23. Formule 3 populationsRôle de la lyse différentielle (Cytolyse ménagée)
24. Histogramme différentiel volumétrique de GB Détermination de 3 sous-populations Reconnaissance des cellules d'après le volume résultant, par variation d’impédance
3 sous populations : Lymphocytes, Monocytes, Granulocytes.
Les anomalies de distribution sont signalées par des alarmes.
26. Hydrofocalisation
27. La mesure optique
29. Formule 5 Populations : critères de reconnaissance Les automates associent divers principes technologiques permettant l’accès à divers critères de reconnaissance Variation Impédance (= Volume cellulaire)
Principe Coulter pour le volume, ou mesure optique pour la taille
Diffraction lumineuse (= taille cellulaire et Granularité)
Diffraction de la lumière par la cellule (différents angles)
Cytochimie sélective
Coloration d’un élément de la cellule, par simple affinité (ex:coloration des granulations éosinophiles) ou par activité enzymatique chromogène sélective (ex: peroxydase des granulations)
Conductivité (opacité) Courant Radio Haute Fréquence (RF)
Structure de la cellule par un conduction courant haute fréquence
Cytolyse
Lyse sélective de populations. Ex: tous les GB sauf PB. (évidemment dans tous les cas de FL complète automatisée, la lyse de GR est obligatoire
30. Détermination de la formule 5 populationsChaque société sur ses automates combine plusieurs technologies et donc plusieurs critères de reconnaissance Impédance + Conductivité HF + Diffraction lumineuse
BeckmanCoulter Automates MAXM, HmX, GenS, LH500, LH750
Impédance + Cytolyse + Cytochimie (Actvité peroxydasique)
BayerDiagnostics Automates Advia120, Technicon H2, H3
Impédance + Cytolyse + Cytochimie (Coloration des granulationsEo.)
HoribaAbx Automates Pentra60, Pentra80, Pentra120
BayerDiagnostics Automates Advia70
BeckmanCoulter Automates ACT 5Diff
Diffraction lumineuse + Cytochimie (Eosino) + Cytolyse
Sysmex SF3000, XE2100
Diffraction lumineuse multi-angulaire sans cytolyse
AbbottDiagnostics Automates CELL-DYN 3200, 3700, 4000
31. Horiba ABX Impédance/Cytolyse/Cytochimie
33. Horiba ABX Impédance/Cytolyse/Cytochimie
34. Horiba ABX Impédance/Cytolyse/Cytochimie
37. Beckman Coulter Impédance/ConductivitéHF/Diffraction
39. Beckman CoulterImpédance/ConductivitéHF/Diffraction Analyse en 3D
41. Abbott DiagnosticsDiffraction Laser multi-angulaire
42. Abbott Diagnostics Diffraction Laser multi-angulaire Angles de diffraction et critères de reconnaissance
43. Abbott Diagnostics Diffraction Laser multi-angulaire Diffractogrammes
47. Bayer-Technicon Diffraction/Cytolyse/Cytochimie Diffraction lumineuse enregistrée sous deux angles différents
49. Bayer-Technicon Diffraction/Cytolyse/Cytochimie Diagramme Perox et Diagramme Basophiles
50. SysmexVolume/RF/Cytolyse
51. Volume/RF/Cytolyses
52. Volume/RF/Cytolyses Matrice RF/Volume et Histogrammes Eo et Ba
53. Le marquage d’autres types cellulairesLes RéticulocytesMarquage fluorescent sur ARNs résiduels
54. RéticulocytesFluorescence vs Complexité
55. Diffraction lumineuse + Cytolyse Sysmex
56. SysmexDiffraction lumineuse/Cytolyse
57. Diffraction lumineuse/CytolyseEnregistrement de deux angles de diffraction
58. Diffraction lumineuse/CytolyseFormule Ly, Mo, Eo, Ne+Ba
59. Diffraction lumineuse/CytolyseDétermination de la 5 ème pop : les Neutrophiles
60. Diffraction lumineuse avec ou sans cytolyse complémentaire Abbott
61. RéticulocytesNouveau bleu de méthylène
62. Cytolyse complémentaire Abbott (CD 3200)
63. Cytolyse : le NOCCD 3200
64. Diffraction lumineuse + Marquage Abbott
65. Marquage à l'iodure de propidium CD 4000
66. Analyse de la fluorescence Marquage des noyaux accessibles
67. LE MARQUAGE D'AUTRES TYPES CELLULAIRESRETICULOCYTESCD4/CD8
68. Lymphocytes T4/T8Marquage des sites CD4/CD8 par cytosphères (Ag-Ac)