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Auteur : Bruno Flamand, IUT de Dijon

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Auteur : Bruno Flamand, IUT de Dijon

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Presentation Transcript


    8. Automatisation de l'hémogramme La chronologie par étapes

    11. Deux principes très différents:

    12. La variation d'impédance Principe Coulter

    13. Construction des histogrammes de distribution volumétrique: 1-amplification des impulsions (µV en mV) 2-tri des impulsions selon des seuils électroniques 3-Répartition des impulsions dans des canaux électroniques (256 ou 128) en fonction du niveau d’impulsion donc du volume cellulaire 4-comptage des impulsions dans un intervalle de volume cellulaire

    14. Numération des Globules Rouges et des Plaquettes Bac de comptage des GR/PLT Comptage et mesure du volume à partir d'une suspension cellulaire diluée en solution isotonique: taux de dilution élevé (1/10 000 à 1/20 000 ), ce qui permet de rendre négligeable une interférence des GB Un seul bac de comptage: Toute particule d'un volume supérieur à 25 fl (et inférieur à 250 fl) est comptée comme un GR Toute particule d’un volume supérieur à 2 fl (et inférieur à 25 fl) est comptée comme une PLT Chaque particule est placée dans un histogramme de distribution volumétrique

    15. Numération des Globules Rouges Histogramme des GR Mise en évidence de fragments de cytoplasme ou de grandes plaquettes par l'analyse de l'histogramme à partir de 24 fl.

    16. Numération des Globules Rouges Les paramètres calculés L'IDR ou RDW (Red Cell Distribution Width) L'IDR est une valeur statistique correspondant au CV % calculé sur la distribution des rouges = coefficient d'anisocytose.

    17. Numération des Plaquettes Histogramme des PLT et paramètres calculés

    18. Numération PLT Existent des seuils variables permettant élimination risques d’interférences et numérations justes

    19. Numération des globules blancs Bac de comptage des GB Comptage à partir d'une suspension cellulaire diluée en liquide hémolytique: taux de dilution faible, (1/200 à 1/300) Un bac de comptage réservé Toute particule d'un volume supérieur à 35 fl est comptée comme un globule blanc. Les globules rouges sont lysés (ammonium quaternaire, ferri cyanure, cyanure de K+), permet la libération de Hb CyanMetHb Une partie de la dilution des leucocytes passe dans une cuve spectrophotométrique pour la mesure à 540 nm

    20. Le résultat de numération est assujeti à une correction dite "correction de coïncidence". Occasionnellement deux ou trois cellules peuvent traverser l'orifice de comptage en même temps. Une impulsion de grande amplitude est générée. La fréquence de ces passages en coïncidence est statistiquement prévisible en fonction du nombre de cellules. Cette correction est réalisée automatiquement par les analyseurs. Correction de passage en coïncidence Doublet ou triplet cellulaires

    21. LA FORMULE LEUCOCYTAIRE automatisée TROIS POPULATIONS ou CINQ POPULATIONS (5 Diff)

    23. Formule 3 populations Rôle de la lyse différentielle (Cytolyse ménagée)

    24. Histogramme différentiel volumétrique de GB Détermination de 3 sous-populations Reconnaissance des cellules d'après le volume résultant, par variation d’impédance 3 sous populations : Lymphocytes, Monocytes, Granulocytes. Les anomalies de distribution sont signalées par des alarmes.

    26. Hydrofocalisation

    27. La mesure optique

    29. Formule 5 Populations : critères de reconnaissance Les automates associent divers principes technologiques permettant l’accès à divers critères de reconnaissance Variation Impédance (= Volume cellulaire) Principe Coulter pour le volume, ou mesure optique pour la taille Diffraction lumineuse (= taille cellulaire et Granularité) Diffraction de la lumière par la cellule (différents angles) Cytochimie sélective Coloration d’un élément de la cellule, par simple affinité (ex:coloration des granulations éosinophiles) ou par activité enzymatique chromogène sélective (ex: peroxydase des granulations) Conductivité (opacité) Courant Radio Haute Fréquence (RF) Structure de la cellule par un conduction courant haute fréquence Cytolyse Lyse sélective de populations. Ex: tous les GB sauf PB. (évidemment dans tous les cas de FL complète automatisée, la lyse de GR est obligatoire

    30. Détermination de la formule 5 populations Chaque société sur ses automates combine plusieurs technologies et donc plusieurs critères de reconnaissance Impédance + Conductivité HF + Diffraction lumineuse BeckmanCoulter Automates MAXM, HmX, GenS, LH500, LH750 Impédance + Cytolyse + Cytochimie (Actvité peroxydasique) BayerDiagnostics Automates Advia120, Technicon H2, H3 Impédance + Cytolyse + Cytochimie (Coloration des granulationsEo.) HoribaAbx Automates Pentra60, Pentra80, Pentra120 BayerDiagnostics Automates Advia70 BeckmanCoulter Automates ACT 5Diff Diffraction lumineuse + Cytochimie (Eosino) + Cytolyse Sysmex SF3000, XE2100 Diffraction lumineuse multi-angulaire sans cytolyse AbbottDiagnostics Automates CELL-DYN 3200, 3700, 4000

    31. Horiba ABX Impédance/Cytolyse/Cytochimie

    33. Horiba ABX Impédance/Cytolyse/Cytochimie

    34. Horiba ABX Impédance/Cytolyse/Cytochimie

    37. Beckman Coulter Impédance/ConductivitéHF/Diffraction

    39. Beckman Coulter Impédance/ConductivitéHF/Diffraction Analyse en 3D

    41. Abbott Diagnostics Diffraction Laser multi-angulaire

    42. Abbott Diagnostics Diffraction Laser multi-angulaire Angles de diffraction et critères de reconnaissance

    43. Abbott Diagnostics Diffraction Laser multi-angulaire Diffractogrammes

    47. Bayer-Technicon Diffraction/Cytolyse/Cytochimie Diffraction lumineuse enregistrée sous deux angles différents

    49. Bayer-Technicon Diffraction/Cytolyse/Cytochimie Diagramme Perox et Diagramme Basophiles

    50. Sysmex Volume/RF/Cytolyse

    51. Volume/RF/Cytolyses

    52. Volume/RF/Cytolyses Matrice RF/Volume et Histogrammes Eo et Ba

    53. Le marquage d’autres types cellulaires Les Réticulocytes Marquage fluorescent sur ARNs résiduels

    54. Réticulocytes Fluorescence vs Complexité

    55. Diffraction lumineuse + Cytolyse Sysmex

    56. Sysmex Diffraction lumineuse/Cytolyse

    57. Diffraction lumineuse/Cytolyse Enregistrement de deux angles de diffraction

    58. Diffraction lumineuse/Cytolyse Formule Ly, Mo, Eo, Ne+Ba

    59. Diffraction lumineuse/Cytolyse Détermination de la 5 ème pop : les Neutrophiles

    60. Diffraction lumineuse avec ou sans cytolyse complémentaire Abbott

    61. Réticulocytes Nouveau bleu de méthylène

    62. Cytolyse complémentaire Abbott (CD 3200)

    63. Cytolyse : le NOC CD 3200

    64. Diffraction lumineuse + Marquage Abbott

    65. Marquage à l'iodure de propidium CD 4000

    66. Analyse de la fluorescence Marquage des noyaux accessibles

    67. LE MARQUAGE D'AUTRES TYPES CELLULAIRES RETICULOCYTES CD4/CD8

    68. Lymphocytes T4/T8 Marquage des sites CD4/CD8 par cytosphères (Ag-Ac)

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