PROCEDIMIENTOS DE LABORATORIO PARA EL DIAGNÓSTICO DE LA ENFERMEDAD DE CHAGAS

1. PROCEDIMIENTOS DE LABORATORIO PARA EL DIAGNÓSTICO DE LA ENFERMEDAD DE CHAGAS Bioq. Natalia Peralta Parasitología y Micología Facultad de Química, Bioquímica y Farmacia. Universidad Nacional de San Luis Curso Optativo de grado “Estudio interdisciplinario de la Enfermedad de Chagas”

2. Diagnóstico de laboratorio • La Enfermedad de Chagas es una de las endemias más importantes en nuestro país, siendo uno de los problemas de Salud Pública de mayor distribución en América Latina. • Para su correcto diagnóstico se deben evaluar los datos clínicos, de laboratorio y epidemiológicos. • El laboratorio juega un rol fundamental y muchas veces determinante en el diagnóstico de la infección.

3. Diagnóstico de laboratorio • La enfermedad de Chagas presenta tres etapas clínicas: • Aguda • Crónica sin compromiso orgánico • Crónica con compromiso orgánico Debemos tener en cuenta el período ventana que se produce cuando T.cruzi ingresa al organismo, cumple sus primeros ciclos de desarrollo en el hospedador, que abarca entre 7 a 15 días, período después del cual recién se pueden detectar parásitos circulantes y posteriormente anticuerpos contra el parásito.

4. Diagnóstico de laboratorio Luego del período de Ventana se presentan parasitemias, las que van disminuyendo a medida que transcurre el tiempo, hasta hacerse mínimas o aleatorias. ETAPA AGUDA El diagnóstico de laboratorio debe centrarse en la búsqueda del parásito. MÉTODOS PARASITOLÓGICOS

5. Diagnóstico de laboratorio ETAPA CRÓNICA El diagnóstico se realiza mediante la demostración de anticuerpos específicos anti Trypanosomacruzi. MÉTODOS SEROLÓGICOS

6. Diagnóstico de laboratorio En nuestro país, el diagnóstico serológico debe efectuarse por dos reacciones en paralelo, y en caso de discordancia, se debe recurrir a una tercera prueba a fin de definir el resultado.

7. Etapa Aguda Métodos Parasitológicos

8. toma de muestra MOMENTO DEL CONTAGIO Deben realizarse al menos DOS pruebas serológicas para Chagas, a los fines de conocer si el paciente tiene ya una infección previa. Si la misma es negativa la segunda muestra debe ser obtenida respetando el periodo de ventana desde el inicio de la posible infección.

9. ETAPA AGUDA En esta etapa deben realizarse fundamentalmente los MÉTODOS PARASITOLÓGICOS, los cuales pueden ser realizados por distintos procedimientos analíticos, dependiendo de la disponibilidad de recurso humano capacitado y equipamiento en cada laboratorio. La DETECCIÓN DEL PARÁSITO, como en toda enfermedad infecciosa, es el único parámetro de CERTEZA DIAGNÓSTICA.

10. métodos parasitológicos GOTA FRESCA GOTA GRUESA TÉCNICA DE CONCENTRACIÓN DE STROUT MICROSTROUT / MICROMÉTODO HEMOCULTIVO XENODIAGNÓSTICO

11. Diagnóstico de laboratorio- ETAPA AGUDAmétodos parasitológicos-GOTA FRESCA Aumentar irrigación gota de citrato al 2%) 10x / 40x 45 minutos Trypanosomacruzi Sensibilidad 50%

12. Diagnóstico de laboratorio- ETAPA AGUDAmétodos parasitólogicos-GOTA GRUESA Colorear con Giemsa diluido (1/20) 30 minutos. Lavar y secar 1-2min Dejar secar Desfibrinar Colocar 1 a 3 gotas objetivo de 100x aceite Trypanosomacruzi Sensibilidad 50%

13. Diagnóstico de laboratorio- ETAPA AGUDAmétodos parasitológicos-STROUT Sobrenadante Suero Retracción del coágulo 2500 rpm 10 min. 600 rpm 2 min. 5-10 mL Tº amb Sedimento Objetivos de 10x y 40x (45 minutos) Sensibilidad 95%

15. Diagnóstico de laboratorio- ETAPA AGUDAmétodos parasitológicos-MICROMÉTODO /MICROHEMATOCRITO BIOSEGURIDAD Cerrar extremo con plastilina Cortar • 45 segundos a 5000 rpm • 6 a 9 microhematocritoheparinizado Objetivos de 10x y 40x (45 minutos) Sensibilidad 90 a 95%

16. La técnica de MICROHEMATOCRITO NO ES RECOMENDABLE • Puede brindar falsos resultados negativos: • Si el capilar es centrifugado a las revoluciones no adecuadas, existe la posibilidad de que los parásitos se vayan al fondo del capilar con el riesgo de no ser visualizados. • Que el paciente curse con bajas parasitemias y sea muy difícil de observar la presencia del parásito en la interfase, entre la capa de glóbulos blancos y el suero. • Si el capilar se rompe en la interfase, pueden quedar restos de vidrio del capilar sobre el portaobjetos con los restos de la interfase y cuando se coloca el cubreobjeto, no tiene una adecuada adherencia y dificulta la observación. • Por razones de Bioseguridad del operador: • Ya que para su observación deben cortarse aproximadamente 7 capilares, para aumentar su sensibilidad y los restos de vidrios pueden traspasar los guantes del operador e incluso herirlo, sin que éste lo perciba, pudiendo adquirir infecciones como Hepatitis, HIV, Chagas, etc.

17. Diagnóstico de laboratorio- ETAPA AGUDAmétodos parasitológicos-NUEVO MICROMÉTODO Tubo Eppendorf (1,5 ml de capacidad) Mezclar por inversión • 1 gota de heparina • + • 0,5 ml de sangre venosa • 1 min a 3000 rpm Tomar una gota de la interfase (capa de glóbulos blancos) Objetivos de 10x y 40x (45 minutos) Sensibilidad 90 a 95%

18. Diagnóstico de laboratorio- ETAPA AGUDAmétodos parasitológicos-hemocultivo • Consiste en sembrar una muestra de sangre en un medio de cultivo artificial y amplificar el número de parásitos. Como producto del cultivo se obtienen epimatigotes de T. cruzi.

19. Existen técnicas estandarizadas con sangre heparinizada, recolectada en condiciones de estricta asepsia, en medio monofásico (Infusión Cerebro Corazón) y bifásico (pico de flauta de agar sangre). Se incuba a 28ºC y se realizan observaciones microscópicas y subcultivos periódicos, desde los 7 y hasta un máximo de 60 días.

20. El método del hemocultivo es de elección por su menor agresividad para los pacientes, fundamentalmente en la población neonatal, mayor precocidad de resultados y menor requerimiento en infraestructura.

21. Diagnóstico de laboratorio- ETAPA AGUDAmétodos parasitológicos-xenodiagnóstico • Consiste en amplificar el nº de parásitos utilizando al vector. • Se utilizan ninfas de Triatoma infestans, del tercer o cuarto estadio.

22. Se realiza con la aplicación de 4 cajas con 20 ninfas de Triatoma infestans, del tercer o cuarto estadio, con 20 días de ayuno, cubiertas con una gasa, sujetada con una banda elástica. Se sujeta al antebrazo durante 15 o 20 minutos.

23. Luego se deja a 28ºC y 70% de humedad durante 30 o 60 días. El material se obtiene por compresión de la zona abdominal del insecto, entre dos pinzas, sobre un portaobjetos, y se lo diluye con solución fisiológica estéril, luego se agrega un cubreobjeto y se observa con objetivo de 40x , recorriendo aproximadamente 300 campos en guarda griega.

24. Enfermedad de Chagas Diagnóstico parasitológico

25. En resumen, los métodos parasitológicos clásicos: EXAMEN EN FRESCO, STROUT O MICROSTROUT y HEMOCULTIVO empleados secuencialmente, permiten detectar el parásito, y consecuentemente efectuar el diagnóstico de certeza, prácticamente en el 95% de los casos durante el período agudo.

26. Etapa Crónica Métodos Serológicos

27. El concepto básico que debe tenerse en cuenta es que lo que se busca no es el parásito y, por lo tanto, sus resultados nunca proporcionan certeza diagnóstica y deben medirse en términos de probabilidad.

28. Para que las probabilidades de éxito en el diagnóstico serológico se acerquen a la certeza es imprescindible seleccionar adecuadamente El MÉTODO A EMPLEAR, EL MOMENTO DE LA TOMA DE MUESTRA e INTERPRETAR ADECUADAMENTE LOS RESULTADOS.

29. métodos serológicos - HEMAGLUTINACIÓN INDIRECTA (HAI) - ELISA (Enzyme-LinkedInmunoSorbentAssay) - INMUNOFLUORESCENCIA(IF) Los métodos actualmente validados son:

30. Diagnóstico de laboratorio- ETAPA CRÓNICAmétodos serológicos - HEMAGLUTINACIÓN INDIRECTA • Se basa en la propiedad que tienen las proteínas de adsorberse sobre la superficie de glóbulos rojos de carnero o de ave modificada químicamente y actuar como soporte del antígeno. Si en el suero del paciente existen anticuerpos contra los antígenos del parásito, los glóbulos rojos se aglutinan.

32. Diagnóstico de laboratorio- ETAPA CRÓNICAmétodos serológicos - ELISA • Consiste en placas de poliestireno con antígenos solubles del parásitopegados. Sobre cada uno de los reservorios de la placa se coloca suero de pacientes que, si tienen anticuerpos se unen a los antígenos pegados.

33. Luego se agrega un reactivo constituído por anticuerpo anti inmunoglobulinas humanas marcado con una enzima (peroxidasa o fosfatasa alcalina) y posteriormente, se agrega un sustrato de la enzima que, si en la fase sólida se encuentra el doble complejo antígeno- anticuerpo del paciente- anticuerpo marcado, desarrolla un color cuya intensidad es proporcional a la concentración de anticuerpos del paciente y a la afinidad de los mismos.

34. Diagnóstico de laboratorio- ETAPA CRÓNICAmétodos serológicos - INMUNOFLUORESCENCIA • Tiene un fundamento similar al método de ELISA, con algunas diferencias importantes. La primera es que el antígeno es particulado (el parásito entero fijado con formaldehído o glutaraldehído). La segunda diferencia radica en que el segundo anticuerpo está marcado con una sustancia fluorescente, ususalmenteisotiocianato de fluoresceína y, por último, la lectura se realiza en un microscopio equipado con luz UV.

35. Los métodos serológicos emplean antígenos de composición muy variable y ninguno alcanza por sí solo el 100% de efectividad en el diagnóstico. Se deben utilizar dos técnicas con antígenos diferentes y distintos principios que permita alcanzar un rango de sensibilidad entre 98 y 99.5%. Las duplas serológicas que garantizan este rango de sensibilidad podrían ser: ELISA + HAI ELISA + IF HAI + IF

36. Actualmente, la reacción más sensible es ELISA que, por otra parte, si se cuenta con un espectrofotómetro de lectura vertical (lector de ELISA), tiene la ventaja de la objetividad. Permite procesar elevado número de muestras.

37. La prueba de HAI tiene la ventaja de permitir la titulación del nivel de anticuerpos con rapidez y sencillez operativa y también es adecuada para procesamiento de elevado número de muestras.

38. Respecto a la IF, sin dudas se trata de una buena metodología, pero requiere experiencia del operador y depende de la subjetividad del mismo. Por otra parte, el equipamiento requerido no está al alcance de pequeños laboratorios y no es una técnica adecuada para procesar elevado número de muestras.

39. Bibliografía Consultada - De Rissio AM, Cura E, Esteva M, Sosa Estani S, Segura EL y col. Manual de Laboratorio. Enfermedad de Chagasy otras Parasitosis. Instituto Nacional de Parasitologìa“Dr. Mario FatalaChabén”, Ministerio de Salud y Acción Social de la Nación, 8ª Edición, 1996 - Ministerio de Salud de la Nación. Normas para el diagnóstico de la infección por T. cruzi. Buenos Aires: Resolución 523, Ministerio de Salud de la Nación, 1997 - Ministerio de Salud de la Nación. Plan 2011-2016 para el control de la Enfermedad de Chagas en Argentina. Buenos Aires: Programa Nacional de Chagas, Ministerio de Salud de la Nación, 2010 - Normas para el diagnóstico de la infección por T. Cruzi.- Instituto Nacional de Parasitologìa “Dr. Mario FatalaChabén”, 2012