TP1 STRUCTURE de la TIGE (ex. : le Sureau) OBJECTIFS de ce TP

1. TP1 • STRUCTURE de la TIGE • (ex. : le Sureau) • OBJECTIFS de ce TP • Observer l ’organisation de la tige, sa structure anatomique interne. • Observer les différents tissus qui la composent.

2. La tige est un des organes fondamentaux de la plante, à croissance généralement aérienne, à géotropisme négatif, à symétrie axiale. Grandes fonctions: - édification de la plante (méristèmes) - soutien et déploiement des feuilles et des fleurs - transport des sèves, des hormones

3. Le Sureau Sambucusnigra Dicotylédones Caprifoliacées

4. Déroulement du TP1 STRUCTURE de la TIGE 1°) Après l ’ introduction, réalisation d'abord des coupes transversales d’entre-nœuds de tige de Sureau (Sambucus sp.). En garder pour observation sans coloration. Tri possible. (25 à 30 min) 2°) Exposé de 20 mn (pendant le bain à l'eau de javel). 3°) Réalisation de la coloration des coupes (30 min). Observation des coupes non colorées. 4°) Observation des coupes colorées au microscope et dessin.

5. 5°) Rédaction d'un compte-rendu par étudiant comportant : - un dessin d'un détail montrant une portion de l’épiderme, du suber avec l ’AGSP, du cortex, des tissus conducteurs (avec l ’AGLL) et du parenchyme médullaire. - un commentaire sur les structures observées et leurs fonctions.

6. Réalisation de coupes colorées • transversales d'organes végétaux. • RECOMMANDATIONS • Insérer l'organe à couper dans une gouttière de moëlle de sureau si nécessaire. Ou couper directement (cas de la tige). • Faire de nombreuses coupes (10-15) très fines et le plus transversales possible avec une lame de rasoir. Mettre les coupes en attente dans de l'eau dans un bouchon percé afin qu'elles ne ne déhydratent pas et pour pouvoir les changer de bain facilement. • Avant de réaliser le protocole de coloration, réserver quelques coupes qui seront gardées dans l’eau. • Ne pas oublier d'agiter les coupes pendant chaque bain afin de les décoler les unes des autres.

7. PROTOCOLE de COLORATION • 1°) Mettre 20 mn dans de l'eau de javel dilué. • Vide les cellules (hydrolyse).Temps limité pour ne pas attaquer les parois. Prolonger le traitement pour du matériel frais ou contenant beaucoup d'inclusions (réserves, mucilage). • 2°) Rincer à l'eau, 2 à 3 bains ou à la pissette. • Stoppe l'action de l'eau de javel. • 3°) Mettre 5 mn dans de l'eau acétique à 10%. • Mordançage: améliore la fixation des colorants. • 4°) Eponger sans rincer. • 5°) Mettre 5 mn dans le colorant (verser au compte-goutte). Colorant: carmino-vert de mirande • Carmin: colore les parois pecto-cellulosiques en rose à rouge violacé Vert de mirande: colore les parois secondairement • imprégnées de lignine, cutine et subérine en vert, en bleu ou en bleu-vert. Domine le rose. • 6°) Rincer à la pissette puis laisser au minimum 5 mn dans de l'eau. Conserver dans l'eau. • Elimine l'excès de colorant = "régression" de la coloration. • 7°) Montage • Déposer 1 ou 2 coupes sur une lame, dans une goutte d'eau. Recouvrir d'une lamelle. Notation des coupes éventuellement.

9. TIGE Dicotylédones

12. Cortex = Parenchyme, Collenchyme, sclérenchyme Composants du XYLÈME Vaisseaux,trachéides, parenchyme Fibres sclérifiées Epiderme Moelle (parenchyme médullaire) AGLL ou cambium Faisceaux cribro-vasculaires sur 1 cycle Moelle Tubes criblés et cellules compagnes Fibres Cortex Structure d ’une tige de Dicotylédone (luzerne) Composants du PHLOEME

13. Tige des dicotylédones • Structure primaire mise en place par le méristème primaire • Épiderme • Collenchyme • Parenchyme cortical • Sclérenchyme • Faisceaux cribro-vasculaires • parenchyme médullaire

14. Extérieur de la tige Epiderme Collenchyme Parenchyme Sclérenchyme Chez la Bryone CT Tige Intérieur de la tige

15. Épiderme Collenchyme Parenchyme cortical Sclérenchyme Faisceaux cribro-vasculaires Parenchyme médullaire Protection -échange Soutien (externe) Photosynthèse -réserve Soutien (interne) Circulation des séves réserve Tissus primaires Fonctions

16. Faisceau cribro- vasculaire renoncule

17. sclérenchyme phloème primaire xylème primaire Faisceau cribro-vasculaire

18. XYLEME I Trachéides Vaisseaux ligneux Parenchyme xylémien Fibres de soutien PHLOEME I Tubes criblés Cellules compagnes Parenchyme phloémien Fibres de soutien Faisceaux cribro-vasculairesrépartis sur un seul cyclesuperposés ( phloème externe)

19. TIGE Monocotylédones

20. Tige de monocotylédone

21. xylème Espace Vaisseau Air ligneux sclérenchyme Epiderme Tissu interne Faisceaux cribro-vasculaires sur plusieurs cycles Cellule Cellule criblée compagne Structure d ’une tige de Monocotylédone phloème

22. Tige de monocotylédones • Structure primaire i.e. mise en place par le méristème primaire • Épiderme • Parenchyme cortical • Sclérenchyme • Faisceaux cribro-vasculaires • parenchyme médullaire

23. Épiderme avec stomate Parenchyme chlorophyllien sclérenchyme Parenchyme médullaire Faisceau cribro- vasculaire Phloème I Xylème I Tige de monocotylédone

24. Faisceau cribro- vasculaire v Lacune Chaume de graminée. Ex : l ’Avoine Avena sativa

25. sclérenchyme XYLEME I PHLOEME I sclérenchyme parenchyme FCV de MAIS

26. Cellule compagne Phloème de Maïs

27. Vaisseau ligneux Paranchyme xylémien lacune XYLEME I

28. Évolution des structures • Monocotylédones • Uniquement structures primaires • Dicotylédones • herbacées : structures primaires +début de structures secondaires • ligneuses : disparition des structures primaires + fort dévoloppement des structures secondaires

29. TISSUS SECONDAIRESmis en place par les méristèmes secondaires AGLL= assise génératice libéro-ligneuse AGSP= assise génératrice subéro-phellodermique

30. Méristèmes secondaires Extérieur de la tige Suber = liège AGSP = phéllogène Phelloderme Phloème secondaire = liber AGLL = cambium Xylème secondaire = bois Intérieur de le tige

32. AGLL Assise génératrice libéro-ligneuse cambium

33. Cambium fasciculaire Phloème I Xylème I Cambium Inter-fasciculaire

34. HARICOT Coupe Transversale de Tige AGLL

35. Coupe de tige epiderme collenchyme cortex parenchyme sclerenchyme phloème Faisceau Cribro- vasculaire cambium xylème

36. CAMBIUM intrafasciculaire ou AGLL

37. CAMBIUM interfasciculaire

38. Phloème I Cambium début de fonctionnement Xylème I

39. C a m b i u m V a s c u l a i r e T u b e s C r i b l é s Phloème secondaire Xylème secondaire

40. Xylème II CT Tige Solanum dulcamara

41. AGSP Assise génératrice subéro-phellodermique phéllogène

42. Epiderme Divisions anticlines dans l ’assise sous épi-dermique >> AGSP Collenchyme Premiers clivages des cellules de l’assise sous épidermique marquant le début de différentiation de l ’AG subéro phellodermique.

43. Début de mise en place de l ’AGSP

44. SUBER AGSP Fonctionnement de l ’AGSP

45. E P I D E R M E LIEGE Assise génératrice Subéro-phellodermique

46. épiderme Suber = liége AGSP phelloderme Divisions anticlines

47. lenticelle phellogène

50. Inside Secondary Growth in Stems secondary xylem cambial initials secondary phloem Figure 27-5Diagram showing relationship of vascular cambium to its derivative tissues-- secondary xylem and secondary phloem. The darker cells are the more recently derived ones. The vascular cambium is made up of two types of cells--fusiform initials and ray initials--which form the axial and radial systems, respectively. The arrangement of the cambial initials determines the organization of the secondary vascular tissues. Outside When the cambial initials produce secondary xylem and secondary phloem, they divide periclinally. Following division of an initial, one daughter cell (the initial) remains meristematic, and the other,(the derivative of the initial) eventually develops into one or more cells of the vascular tissue. Cells produced toward the inner surface of the vascular cambium become xylem elements, and those produced toward the outer surface become phloem elements. The ray initials divide to form vascular rays, which lie at right angles to the derivatives of the fusiform initials. With the production of additional secondary xylem, the vascular cambium and secondary phloem are displaced in an outward direction. The diagrams (left to right) represent successively more mature stages.