470 likes | 1.22k Views
Proteinler izoelektrik noktalarinin
E N D
2. Proteinler izoelektrik noktalarinin üzerindeki pH degerlerinde (?) yüklüdürler ve elektriksel alanda anoda göç ederler;izoelektrik noktanin altindaki pH degerlerinde ise (+) yüklüdürler ve katoda göç ederler.
3. Bu özellikleri nedeniyle protein karisimlarinin ayrilmasinda elektroforez yönteminden genis çapta yararlanilir. Bu teknik proteinlerin elektriki alanda göçüne dayanir.
5. KULLANILAN JELLER: NISASTA
AGAROZ
SELÜLOZ ASETAT
POLIAKRILAMIT
(EN GENIS ÇAPTA)
8. KATALIZÖR: TEMED
(N,N,N',N' -TETRAMETILENETILENDIAMIN
10. Poliakrilamit jelde por büyüklügü, akrilamit ve bis içerigini ifade eden % T ve % Cbis terimleri ile belirlenir.% T, total akrilamit % si (agirlik/hacim);% Cbis ise bis’in monomere orani (agirlik/agirlik) olup formüllere göre hesaplanirlar:
11. Akrilamid (g) + Bis (g)% T = ----------------------------------------- x 100 Hacim (ml) Bis (g)% Cbis= ------------------------------- x 100Akrilamid (g) + Bis (g)
12. Bu formüllere göre: %20 T ve %5 Cbis içeren bir jelde %20 total akrilamit (akrilamit + bis) bulunur ve total akrilamitin % 5’i bis’tir.
%T arttikça por çapi küçülür. %5 Cbis her türlü % T kosulunda optimum por büyüklügünün olusmasina yol açar.
13. Çesitli akrilamit konsantrasyonlarinda ayrimi yapilabilecek polipeptit agirliklari Akrilamit konsantrasyonu pp.agirligi(kDa)
15 12-43
10 16-68
7.5 36-94
5 57-212
17. GÜÇ KAYNAGI
18. Kullanilan prosedüre göre hazirlanan monomer karisimi, elektroforez aletinin jel dökme aparatinda, jelin çesitli kalinlik ve ebatta hazirlanabilmesine olanak veren, sandviç seklinde hazirlanmis iki cam (jel kaseti) arasina veya jel tüplerine doldurulur, tarak takilir ve polimerizasyona birakilir.
19. Oksijen polimerizasyonu engellediginden, monomer karisiminin havasi alinmalidir. Bu da karisimdan inert bir gaz geçirerek, vakum uygulayarak ya da ultrasonik su banyosunda bekletilerek saglanir.
20. Jel karisimi tüp ya da kaset içine döküldügünde, üst yüzeydeki gerilim nedeniyle ortaya çikan egimli yüzey, bant dagiliminin bozuk olmasina yol açar. Bunu önlemek için, polimerizasyon baslamadan önce jelin yüzeyi çok ince bir su veya su ile doyurulmus 2-butanol tabakasi ile kapatilir.
21. Aletin tank bölümüne yerlestirilir.Bu yerlestirimden sonra jel tamponla temas edecek ve elektrik akiminin geçmesi saglanacaktir.
23. Elektroforezde kesiksiz (“continuous”) ve kesikli (“discontinuous”) olmak üzere 2 farkli tampon sistemi kullanilabilir. Kesiksiz sistemde tek bir ayirici jel vardir; tanklarda ve jelde ayni tampon kullanilir. Kesikli sistemde ise jel farkli tamponlarla hazirlanmis iki kisimdan olusur: (1) Büyük porlu yükleme (“stacking”) jeli; (2) Küçük porlu ayirma (“separating”) jeli.
25. Bu sistemde kullanilan tank tamponlari da jel tamponlarindan farklidir. Bu farklilik jel boyunca bir pH ve voltaj gradientinin olusumuna yol açar. Böylece daha seyreltik örneklerle çalisilabilir ve daha iyi bir ayrisim elde edilir.
26. Elektrik akimi geçirmek üzere anot ve katot baglantilari yapilir ve güç kaynagi çalistirilir: Protein elektroforezinde elektriksel parametrelerden biri, genellikle akim sabit tutulur.
Bu durumda proteinlerin göç hizi da sabittir, ancak direnç artikça isi açiga çikar.
Islem sabit voltajda gerçeklestirilirse, direnç artikça göç hizi düser, ancak isi artmaz.
27. ISLEM TAMAMLANIGINDA: boyama yapilarak ayrilan proteinler gözle görünür hale getirilir. En çok kullanilan boyar madde “Coomassie blue” dur. Daha duyarli bir boyama teknigi ise gümüs boyamadir.
Jel boyandiktan sonra fotografi çekilebilir, ya da densitometre ile taranarak analiz edilebilir.
Jelde ayrilmis radyoaktif örneklerin analizi için otoradyografi yöntemlerinden yararlanilir.
Membrana transfer (“blot-transfer”) teknikleri de son yillarda genis çapta kullanim alani bulmaktadir. (Western blotting ve immünoblotting)
28. PROTEIN ELEKTROFOREZINDE ALTERNATIF SAPTAMA YÖNTEMLERI
29. GÜMÜS BOYAMA
30. Duyarlilik yüksek oldugu için TEMIZLIK çok önemlidir. Cam esyalar çok temiz olmali,
Tüm çözeltiler filtre edilmeli,
Daima eldiven giyilmeli (fakat üzerinde pudra kalmamali),
Eger mümkünse her adim için ayri bir kap kullanilmalidir.
31. Kullanimdan sonra Ag çözeltileri LAVABOYA DÖKÜLMEMELIDIR! Seyreltik (0.1 N) HCl çözeltisine dökülerek zararsiz AgCl sekline çevrilmelidir. Böylece potansiyel patlayici Ag komplekslerinin olusmasi önlenmelidir.
32. Ag boyama
33. SONUÇLARIN KAYIT ALTINA ALINMASI: Özellikle gümüs boyamada en iyi bant görüntüsünün ne zaman olusacagi belirsizdir. Onun için boyamanin son asamalarinda 3-4 dakika araliklarla birkaç kez fotograf çekilir.
34. Coomassie blue
35. JELLERIN KURUTULMASI Jel, kurutularak da saklanabilir. Otoradyografi yapilacaksa mutlaka kurutulmalidir. Ancak bu islem oda sicakliginda filtre kagidi üzerinde bekletme seklinde yapilamaz, çünkü jel büzülür ve kirilir.
Bu amaçla gelistirilmis aletler vardir. Ancak sistem basit oldugu için pratik olarak gelistirmek de mümkündür.
38. JEL GÖRÜNTÜLEME SISTEMI
41. SDS-PAGE: SODYUM DODESILSÜLFAT-POLIAKRILAMIT JEL ELEKTROFOREZI SDS, polipeptidlerin ana iskeletini çevreleyerek proteinleri denatüre eden anyonik bir deterjandir. Ayrica proteine, yapinin uzunluguna bagli olarak degisen oranda bir negatif yük kazandirmaktadir. Polipeptidler SDS ve indirgeyici bir ajanla isleme sokuldugunda, ayni yük yogunluguna sahip, fakat farkli uzunlukta (?) yüklü yapilar haline dönüsürler.
42. SDS-PAGE : Polipeptidlerin molekül agirliklarinin belirlenmesine olanak verir.
Proteinleri denatüre ettigi için (alt birimler ayrildigi için) proteinin monomerik mi, oligomerik mi oldugunu anlamamiza yardim eder.
Ancak biyolojik aktivite ortadan kalkar.
43. Determination of molecular weight of proteins by SDS-PAGE Proteins, those molecular weights are unknown (samples) and those molecular weights are known (STANDARDS) are electrophoretically separated on the same gel and stained.