530 likes | 815 Views
Elválasztástechnikai Kutató és Oktató Laboratórium. Elválasztástechnika. kv1n1lv1. Tételek. A kromatogram és kromatográfiás csúcs főbb jellemzői, tányérelmélet A gázkromatográfiás rendszer felépítése, a gázkromatográfia állófázisai Mintabevitel a gázkromatográfiában
E N D
Elválasztástechnikai Kutató és Oktató Laboratórium Elválasztástechnika kv1n1lv1
Tételek A kromatogram és kromatográfiás csúcs főbb jellemzői, tányérelmélet A gázkromatográfiás rendszer felépítése, a gázkromatográfia állófázisai Mintabevitel a gázkromatográfiában A gázkromatográfia mozgófázisai, sebességi elmélet Gázkromatográfiás detektorok (kivéve MS) Tömegspektrometriás detektálás a gázkromatográfiában Minta-előkészítés Elektromigrációs módszerek A HPLC-s rendszer felépítése, az egyes elemek szerepe és működése A folyadékkromatográfiás állófázisok fajtái, jellemzése A folyadékkromatográfiás mozgó fázisok és a gradiens elúció Normál fázisú folyadékkromatográfia Fordított fázisú folyadékkromatográfia MIP, affinitáskromatográfia és gélkromatográfia, HIC, HILIC Ionos összetevők elválasztására alkalmas folyadékkromatográfiás módszerek Folyadékkromatográfiás detektorok (kivéve MS) Tömegspektrometriás detektálás a folyadékkromatográfiában
Izokratikus ill. gradiens elúció IZOKRATIKUS mAU tR (min) GRADIENS mAU tR (min)
Pump summary The pump is the most critical piece of equipment for a successfully operating HPLC. Performance Parameters for HPLC pumps: • Flow Precision • Flow Range • Delay Volume • Pressure Pulse • Composition Precision
MIP-MolecularlyImprinted Polimer Célvegyület Polimerizáció (UV vagy T) Célvegyület Monomerek Extrakció Célvegyület - célvegyület MIP Elrendeződés
+ + + + + + + + Affinitás kromatográfia • Állófázis (mátrix)90%-ban agar-agar gél, a többi sephadex gél, cellulóz származékok vagy egyéb polimer. ligandum távtartó
Gélkromatográfia Gél szemcse Pórusok (dp> 100A) Állófázis a kolonnában Nincs kölcsönhatás a minta-molekula és az állófázis között!! Eltérő méretű molekulákból álló minta
Teljes kizárási tartomány lgM Mérési tartomány Teljes áteresztési tartomány V (ml) Gélkromatográfia • Teljes kizárási tartomány- az a nagyobb molekulaméret amelynél nincs visszatartás (holt térfogat); • Mérési (működési) tartomány - az a molekulaméret, amelynél van visszatartás; • Teljes áteresztési tartomány – nagyon kis molekulák, amelyek teljesen átjárják a pórusokat (a retenciós idő konstans);
Ionpár fordított fázisú folyadékkromatográfia [Molekula ION]- N+ Ion-párképző só Mérendő komponens ionos formája [Molekula ION]- N+ C18 szilárd fázis Ionpárképző reagens(Quaterneralkil ammónium só)
Ionpár fordított fázisú folyadékkromatográfia O O- [Molekula ION]+ S Ionpárképző só Mérendő komponens ionos formája O O [Molekula ION]+ S O- C18 szilárd fázis O Ionpárképző reagens(Alkilszulfonsav só) Esetleg: CF3COO-; BF4-; ClO4-, PF6-
Ionpárképző mechanizmus (ioncserés modell) [ION]+ Na+ [ION]+ SO3-Na+ SO3- SO3-Na+ Módosított állófázis C18 szilárd fázis
Ionpár fordított fázisú folyadékkromatográfia • Az RP-IP_HPLC-ben változtatható paraméterek: • Ionpárképző koncentrációja; • Ionpárképző jellege (típusa, lánc hossza, stb.) • Szerves modifikátor típusa, mennyisége; • Puffer koncentrációja, pH-ja; • Idegen só koncentrációja;
Ionpár fordított fázisú folyadékkromatográfia – a szerves fázis hatása
Ionpár fordított fázisú folyadékkromatográfia – ionpárképző típusa
Ionpár fordított fázisú folyadékkromatográfia – ionpárképző típusa
Ioncserés folyadékkromatográfia Ioncsere: ha az állófázis állandó töltéssel rendelkezik; Ioncserélő kapacitás: megkötött ellentétes ion mennyiség egységnyi tömegű tölteten (mmol/g vagy mekv./g); „Ioncserélő gyanták” • Ionkizárásos kromatográfia • Ionkromatográfia
Ioncserélő töltetek KATION CSERÉLŐK Negatív töltésű funkcionális csoportokkal (szulfonil, karbonil, PO4-) ANION CSERÉLŐK Pozitív töltésű (primer, vagy szubsztituált, szekunder, tercier, kvaterner amino, imino, guanidil, stb.) funkcionális csoportokkal AMFOTER (kevert) TIPUSOK Pozitív és negatív töltésű funkcionális csoportokat tartalmazó komplex szerkezettel ERŐS - GYENGE IONCSERÉLŐK DISSZOCIÁCIÓ FOKA (pKA, pKK, pKI) SZERINT „TENTACLE” ELV - KAPACITÁS !
Ionkizárásos folyadékkromatográfia Állófázis: nagy ioncserélő kapacitású anion vagy kation cserélő gyanta; Eluens: puffer (ritkán kis szerves oldószer tartalommal); Alkalmazásai: fermentlevek, szeszesital, üdítőital gyártás (cukrok, savak, alkoholok elválasztása) HOOC-R HO-R Cukor SO-3 SO-3 -OOC-R pórus
Ionkromatográfia A szervetlen anionok, kationok vagy vízben oldódó szerves savak és bázisok meghatározására használjuk Állófázis: kis ioncserélő kapacitású anion vagy kation cserélő gyanta; Eluens: puffer; Detektor: vezetőképesség (elektrokémiai) ionelnyomó után.
Ionkromatográfia Visszatartást befolyásoló tényezők: • Növekvő pH • Nő a savak ionizációja – nő a visszatartás; • Csökken a bázikus vegyületek ionizációja – gyorsan eluálódnak; • Puffer erősség nő • Ioncserélő felületeken megnő a versengés – csökken a retenció; • Nő a hőmérséklet • Egyensúly kedvez a mozgó fázisnak – csökken a retenció.
Ionkromatográfia Szupresszió előtt Szupresszió után Vezetőképesség mS Idő (min)
Ionkromatográfia Szupresszió ioncserés oszloppal (Regenerálni kell!!)cél: a mozgófázis vezetőképességének csökkentése (S/N növelése) Cl- meghatározása Az ionelnyomóban lejátszódó folyamatok (eluens NaHCO3): Gyanta-H+ + Na+ HCO3 --> Gyanta-Na+ + H2CO3Gyanta-H+ + Na+ Cl- --> Gyanta-Na+ + HCl A mozgófázis vezetőképessége jelentősen csökken, az elválasztott ion vezetőképessége a Na ion (50 S*Cm2/equiv.) H ionnal (350 S*cm2/equiv.) történő cseréjével jelentősen megnő. Na+ meghatározása Az ionelnyomóban lejátszódó folyamatok (eluens HCl): Gyanta-OH- + H+ Cl- --> Gyanta-Cl- + H2O Gyanta-OH- + Na+ Cl- --> Gyanta-Cl- + Na+ OH- A mozgófázisból víz lesz, a mintában pediglecseréljük a Cl-(76 S*cm2/equiv) ionokat OH- ionokra (198 S*cm2/equiv).
Ionkromatográfia Alkalmazás (Anion referencia oldat); 0,5M Na2CO3 és NaHCO3 IonPac® AS14; 4*250mm oszlop és IonPac® AG14; 4*50mm előtétoszlop
Ionkromatográfia Alkalmazás (vízminta); 0,5M Na2CO3 és NaHCO3 IonPac® AS14; 4*250mm oszlop és IonPac® AG14; 4*50mm előtétoszlop
Ionkromatográfia 21 TERMÉSZETES AMINOSAV IONCSERÉLŐ KROMATOGRÁFIÁS ELVÁLASZTÁSA Dionex DC-6A ANIONCSERÉLŐN (30X0,46 cm) 3 LÉPÉSES Na-citrát gradiens DETEKTÁLÁS: NINHIDRIN (post-column)
Hidrofób kölcsönhatású kromatográfia (Hidrophobic Interaction Chromatography, HIC)
HIC vs. RPC Mindkét technikában közös és jellemző: - Az álló fázis a hordozóra kötött apoláris ligandum. - A szorpció oka a hidrofób (apolárIs) kölcsönhatás. - A retenciót döntő módon a hidrofóbicitási viszonyok határozzák meg. - Alkalmasak fehérjék elválasztására.
HIC vs. RPC • KÜLÖNBSÉGEK: • - A HIC liganduma gyengébben apoláris, kisebb a felületi koncentrációja. • A HIC esetén sokkal gyengébb a szorpció, a fehérje natív formában (folded) marad, kisebb a denaturáció esélye. • A RPC esetében az erős szorpció megszüntetheti az eredeti struktúrát (unfolding), itt a retenciót elsősorban az elsődleges szerkezet hidrofób jellege határozza meg. • - A RPC esetében a fehérje spontán kötődik a ligandumhoz. Az elúciót szerves oldószer adagolása okozza. A HIC esetében a fehérje kötődése a tölteten és a retenció mértéke a kozmotróp só adagolásával érhető el. Az elúció a só negatív koncentráció gradiensének eredménye. • A RPC esetében a hidrofób kölcsönhatásért döntően az álló fázis (ligandum) felelős, a HIC esetében az áramló fázis (eluens) a domináns tényező
Hidrofil kölcsönhatású folyadékkromatográfia (Hidrophilic Interaction Liquid Chromatography; HILIC)
HILIC Állófázis: mint a normál fázisú kromatográfiában Eluens: mint a fordított fázisú kromatográfiában 3-40% vízzel (A víz az erős oldószer !!!) Alkalmazásai: RP-hez túl poláros, nehezen visszatartható komponensek elválasztására
A detektorok legfőbb jellemzői Szelektív – univerzális Dinamikus tartomány Linearitási tartomány Érzékenység Destruktív – nem destruktív
Komponensek tulajdonságát észlelik A folyadékkromatográfiás detektorok • UV- látható abszorbancia detektor (UV- VIS) • Fluoreszcenciás detektor (FLD) • Elektrokémiai detektor (ECD) • Radiokémiai detektor (RD) • Tömeg detektorok (MSD) Előnyök: specifikusság, érzékenység, szelektivitás Hátrányok: minden vegyület más (pl. más UVmax)
Mozgófázis tulajdonságát észlelik A folyadékkromatográfiás detektorok • Törésmutató detektor (RID) • Vezetőképesség detektor (CD) • Fényszórásos detektor (LSD) Előnyök : nagyon sok komponensre – majdnem univerzális Hátrányok: zaj, érzékenység
UV-VIS detektor • Alapelv: Lambert-Beer törvény
UV-VIS detektor Structure Chromophore max(nm) Amine - NH 195 2 Ethylene - C = C - 190 - Ketone C = O 195 - Ester - COOR 205 Aldehyde - CHO 210 Carboxyl - COOH 200-210 Nitro - NO 310 2 Phenyl 202, 255 Naphthyl 220, 275
UV-VIS detektor – UV spektrum Benzamidofenol Abszorbancia(mAU) Paracetamol • Kromatográfiás elválasztás; • Minél magas hullámhossz annál szelektívebb • maxpH függése • oldószerek, adalékok UV elnyelése 280 nm 4 3 2 1 0 200 250 300 350 400 Hullámhossz (nm)
UV-VIS detektor – UV Cutoff Solvent UV Cutoff (nm) Acetonitrile 190 UV cutoff is the wavelength at which absorbance equals 1, measured in a 1 cm cell with air as a reference. Water 190 Cyclohexane 195 Hexane 200 Methanol 210 Ethanol 210 Diethyl Ether 220 Dichloromethane 220 Chloroform 240 Carbon Tet 265 Tetrahydrofuran 280 (220) Toluene 285
VWD – Variable Wavelenght detector A diffrakciós rács monokromatikus fényt állít elő A monokromatikus fényt megosztjuk a referencia és minta fotodióda között lencse tükör Diffrakciós rács tükör deutérium lámpa tükör Fénynyalábosztó Átfolyó cella tükör Minta fotodióda Az intenzitásbeli különbséget a cellában történő abszorbancia okozza
Diódasoros detektor – DAD, Diodarray detector VisLamp AchromaticLens Diode Array DetectorFlow Cell UVLamp HomiumFilter Grating OpticalSlit