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聚合酶链式反应 (PCR) ( P olymerase C hain R eaction)

聚合酶链式反应 (PCR) ( P olymerase C hain R eaction). 实验目的. 掌握 PCR 技术的原理及技术. 实验原理. PCR ( Polymerase Chain Reaction )法,又称为聚合酶链反应或 PCR 扩增技术,是一种高效快速的体外 DNA 聚合程序。 利用 PCR 技术可在短时间内获得数百万个特异的 DNA 序列的拷贝。 PCR 技术在分子克隆、遗传病的基因诊断等方面得到了广泛的应用。 使用 PCR 法的前提条件是:已知待扩增目的基因或 DNA 片段两侧的序列,根据该序列化学合成聚合反应必需的双引物。.

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聚合酶链式反应 (PCR) ( P olymerase C hain R eaction)

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Presentation Transcript


  1. 聚合酶链式反应(PCR) (Polymerase Chain Reaction)

  2. 实验目的 掌握PCR技术的原理及技术

  3. 实验原理 PCR(Polymerase Chain Reaction)法,又称为聚合酶链反应或PCR扩增技术,是一种高效快速的体外DNA聚合程序。利用PCR技术可在短时间内获得数百万个特异的DNA序列的拷贝。PCR技术在分子克隆、遗传病的基因诊断等方面得到了广泛的应用。使用PCR法的前提条件是:已知待扩增目的基因或DNA片段两侧的序列,根据该序列化学合成聚合反应必需的双引物。

  4. PCR技术实际上是在模板DNA、引物和4种脱氧核苷酸存在的条件下依赖于DNA聚合酶的酶促合成反应。PCR技术的特异性取决于引物和模板DNA结合的特异性。反应分为三步:1变性:在高温条件下,DNA双链解离形成单链DNA;2退火:当温度突然降低时引物与其互补的模板在局部形成杂交链;3延伸:在DNA聚合酶、dNTPs和Mg2+存在的条件下,聚合酶催化以引物为起始点的DNA链延伸反应。以上三步为一个循环,每一循环的产物可以作为下一个循环的模板,几十个循环之后,介于两个引物之间的特异性DNA片段得到了大量复制,数量可达到106~7个拷贝。

  5. PCR技术原理

  6. PCR技术的参数 主要有7个:聚合酶、引物、dNTPs、反应buffer、二价离子、模板、一价离子

  7. 模 板 单、双链DNA或RNA都可以作为PCR的样品。虽然PCR可以仅用极微量的样品(甚至是来自单一细胞的DNA),但是为了保证反应的特异性,一般用ng量级的克隆DNA,μg水平的染色体DNA或104拷贝的待扩增片段来做起始材料。原料可以是粗制品,但不能混有任何蛋白酶,核酸酶,TaqDNA聚合酶抑制剂以及能结合DNA的蛋白,因此DNA样品纯度要尽可能的高。

  8. 引 物 PCR反应产物的特异性由一对上下游引物所决定。下列原则有助于引物的合理设计: * 引物长度以15~30个碱基为宜。 * (G+C)含量最好保持在约40%~60%,应尽量避免数 个嘌呤或嘧啶的连续排列。 *避免引物内部形成二级结构。 * 两个引物之间不应发生互补。 * 引物浓度不宜偏高。

  9. dNTP浓度 高浓度dNTP易产生错误掺入,而浓度过低,势必降低反应产物的产量。PCR常用50-200μmol/L的dNTP,此外,dNTP能与Mg2+结合,使游离Mg2+浓度降低。因此,dNTP的浓度直接影响到反应中起重要作用的Mg2+浓度。

  10. 反应buffer 反应缓冲液一般含10-50mmol/L Tris·Cl (20℃下pH8.3-8.8), 50mmol/L KCl和适当浓度的Mg2+。 50mmol/L的KCl有利于引物的退火。另外,反应液可加入5mmol/L的二硫苏糖醇(DDT)或100μg/ml的牛血清白蛋白(BSA),它们可稳定酶活性, 各种Taq DNA聚合酶商品都有自己特定的一些缓冲液。

  11. Mg2+浓度 * Mg2+浓度对反应物的特异性及产量有显著影响。浓度过高,则DNA不易变性;浓度过低,使产物减少。 * 在各种单核苷酸浓度为200μmol/L时,Mg2+为1.5mmol/L较适合。若样品中含EDTA或其他螯合物,可适当增加Mg2+的浓度。在高浓度DNA及dNTP条件下进行反应时,也必须相应调节Mg2+的浓度。

  12. PCR用酶的特性

  13. 温泉中水生嗜热杆菌

  14. TaqDNA聚合酶 Taq多聚酶从嗜热菌分离得到,现在经基因克隆的重组体产物Taq酶最适pH8.3-8.8(室温8.3-8.4),反应温度75-80℃, 95℃以上失活明显。无3´→5´校读活性,对SDS敏感。 在100μl反应液中,一般加入2.5U的酶量,足以达到每分钟延伸1000~4000个核苷酸的掺入速度。酶量过多导致产生非特异性产物。

  15. PCR反应参数

  16. 变性温度与时间 • 94-95度/1min 可以满足一般要求 • 变性时间过长易造成酶失活

  17. 退火温度 一般设定比理论Tm低5℃,但实际上与引物一级结构序列有关,设计不当可造成非特异性扩增,此时应调整温度和相应的时间,一般提高温度会增加扩增的特异性。短时间退火有利于产物的特异性。

  18. 延伸温度和时间 延伸温度一般72度。 延伸时间决定于酶的反应速度和扩增片段长度。

  19. 实验操作 1 取一个0.2ml eppendorf管,添加以下各种成分反应液 ddH2O 11.8 µl 模板DNA 1 µl 上游引物(2.5µmol/L) 1.6 µl 下游引物(2.5µmol/L) 1.6 µl dNTP mixture(2.5mmol/L) 1.6 µl 10倍×缓冲液+ MgCl2 2 µl Taq酶 (2.5 U /ul) 0.4 µl 总体积 20 µl 2 稍作离心,将反应管放入PCR仪中。

  20. 3. 设定反应程序: 94℃条件下使模板DNA预变性3min。 变性 94℃ 30sec 退火 54℃ 30sec 30 cycles 延伸 72℃ 1min 30sec 最后在72℃条件进行延伸7-10min。 4 ℃保温 4. 取5 µl反应液用1%琼脂糖凝胶进行电泳,鉴定PCR产物是否存在以及大小。

  21. 1 2 3 M 4 5 PCR产物 的琼脂糖凝胶电泳 1,2,4,5:PCR产物;3,阴性对照;M,DNA分子量标准(从上向下:2000bp,1000bp,750bp,500bp,250bp,100bp)

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