310 likes | 630 Views
A nvekedst befolysol tnyezok. TpanyagokSznforrs (CH, AS sznlnca), nitrognforrs (pepton, ammnia) !! nvekedsi faktorok, vitaminok, nyomelemekHomrskletpszichrofil (<20C) mezofil termofil (>50 Thermus aquaticus)pHacidofil (Lactobacillus) alkalofil (Vibrio cholerae), legtbb
E N D
1. BAKTÉRIUMOK TENYÉSZTÉSE
2. A növekedést befolyásoló tényezok Tápanyagok
Szénforrás (CH, AS szénlánca), nitrogénforrás (pepton, ammónia) !!
növekedési faktorok, vitaminok, nyomelemek
Homérséklet
pszichrofil (<20°C) mezofil termofil (>50 Thermus aquaticus)
pH
acidofil (Lactobacillus) alkalofil (Vibrio cholerae), legtöbb 7,2-7,6
3. Oxigénigény Obligát aerob (csak O2 jelenlétében M. tuberculosis) / fakultatív anaerob / obligát anaerob (Clostridiumok, toxikus az O2,)
CO2 atmoszféra mértéke
légköri = 0.03%
Mikroaerofil (alacsony O2, magas CO2, C. jejuni ), aerotoleráns (02 jelenlétében is fermentál S.pyogenes)
Toxikus oxigénformák közömbösítésének képessége:
Szuperoxid diszmutáz (2 O2- + 2 H+ ? H2O2 + O2)
Kataláz (2 H2O2 ? 2 H2O + O2)
4. Táplálkozási típusok - I Autotróf
szervetlenbol szervest építenek fel
ehhez energiaforrás:
fény (fotoautotrófok)
oxidáció (kemoautotrófok)
pl. szulfid ? szulfát, nitrit ? nitrát
kórtani jelentoségük nincs
5. Táplálkozási típusok - II Heterotróf
szerves tápanyagot igényelnek
C-forrás: glükóz, tejsav, keményíto,
N-forrás: aminosavak,
majdnem az összes patogén ide tartozik
Paratróf
csak élo sejtekben tudnak szaporodni
pl. lepra kórokozója (egértalpban), rickettsiák
6. Energianyerés típusai Légzés (aerobok!)
van kataláz és szuperoxid-diszmutáz enzim
szénhidrát anyagcsere:
glükóz ? piroszolosav ? citrátkör ? légzési lánc ? sok ATP + CO2 + H2O
terminális elektron-akceptor = O2
Fermentáció (anaerobok!)
nincs enzim a káros oxidációs termékek semlegesítésére
glükóz ? etanol + tejsav ? kevés ATP + CO2 + H2
7. Baktériumok növekedési görbéje
8. Táptalajok - I Halmazállapot szerint
folyékony (húslé, buillon)
szilárd (lemez, magas, ferde agar, Koch találta ki) Petri csésze!
Eloállítás szerint
természetes (epe, tej, húslé, ...)
mesterséges
Funkció szerint
normál
szelektív (pl antibiotikummal gátlódik ami nem érdekel minket)
differenciáló ( biokém tul alapján elkülöníthetoek a hasonló baktériumok)
dúsító
9. Táptalajok - II Bouillon
10. Táptalajok - III Egyszeru lemez agar
11. Telepmorfológiai jellemzok telep nagysága
telep fénye (tükrözodo, opál, áttetszo)
telep alak (ép szélu, csipkézett, köldökös , kerek, platószeru)
telep állaga (sima, száraz, gumiszeru, elfolyós)
telep színe (pigment termelés)
hemolízis: ? és ?
tenyészet szaga (hársfa, fokhagyma)
12. Hogy ezeket lássuk, IZOLÁLT TELEPEK-re van szükségünk: Telepmorfológiai jellemzok
13. Mintatenyészetek - I Escherichia coli agar táptalajon
semmi különös jellemzo, átlagos telepek
14. Mintatenyészetek - II Bacillus cereus agar táptalajon
erosen nyálkás, csipkézett szélu, felho-szeru (medúzafo-szeru) tenyészet, ritka az izolált telep
15. Mintatenyészetek - III Proteus mirabilis agar táptalajon
rajzás !
16. Mintatenyészetek - IVIntracelluláris pigmenttermelés Staphylococcus aureus
arany pigment
Staphylococcus epidermidis
fehér pigment
17. Mintatenyészetek - V Extracelluláris pigmenttermelés Pseudomonas auruginosa
többféle pigment, extracellulárisan ?? az egész táptalaj elszínezodik
a zöld pigment dominál táptalajon
19. Mintatenyészetek - VI - hemolízis ?-hemolízis:
Staphylococcus aureus, Streptococcus pyogenes, Bacillus cereus
teljes feltisztulás
20. Anaerob tenyésztésI - Fizikai módszerek O2 kiforralása
O2 kiszívása (vákuum anaerosztát)
Szúrt tenyészet magas agaron (karácsonyfa)
21. Anaerob tenyésztésII - Kémiai módszerek 1. Redoxpotenciál csökkentése
Holman médium (apróra darált húsdarabkák)
tioglikolátos médium
indikátor jelzi az átlevegosödést
lezárás paraffin gyuruvel
22. Anaerob tenyésztésII - Kémiai módszerek 2. Preis módszer
erosen O2-igényes reakció játszódik le a tenyésztési térben
GasPak: a tenyészetek behelyezése után a felszakított zacskókban levo reagensek reagálni tudnak egymással, elvonva az oxigént (CO2 fejlesztés)
23. Anaerob tenyésztésIII - Biológiai módszer Fortner eljárás
elavult!!
A két részre osztott Petri csésze egyik térfelén erosen aerob baktériumot (pl. Serratia) tenyésztünk, ami elvonja az összes oxigént
24. Hemokultúra - I Vér vagy más steril minta tenyésztésére
Milyen esetben alkalmazzuk:
meningitis, endocarditis, bacteraemia, szisztémás fertozés gyanúja, peritonitis, FUO (=ismeretlen eredetu láz), mesterséges lélegeztetés során kialakuló fertozés, kórokozó váltás terápia alatt, implantáció utáni láz,
Inkubációs ido: 7-10 nap
de: 80-90%-ban már az elso 24 óra alatt pozitív lesz!
25. Hemokultúra - II Fontos szabályok
Legalább két minta kell: kül. helyekrol, kül. idoben !
Frissen szúrt vénából !!
legjobb a láz kezdetén
elegendo mennyiséget kell levenni (2-30 ml)
Sterilitás!!
Antibiotikum kezelés alatt:
ab-köto gyöngyökkel
Aerob / anaerob palackpár
26. Hemokultúra - III
27. Transzport médiumok - I Transzport közeg
példa: Stuart médium
a baktériumok maximum 48 óráig túlélnek, de nem szaporodnak
0,2%-os agar
Tárolás szobahon!
anaerobok is túlélnek
28. Transzport médiumok - II Transzport táptalajok
A baktériumok szaporodnak is benne, mire a laborba érnek
Példák: Uriline, Uricult, Gonoline, stb.
Muanyag lemez két oldalán két vagy három különbözo táptalaj (szelektívek is)
29. Biofilm - I Jelentosége
vízben élo mikroorganizmusok 99,9%-a biofilmként él a felszíneken
élo szervezetben: felületek kolonizációja (natív és beültetett)
Kialakulása
elokészíto réteg (slime képzés): elektrolitok (Ca2+, Mg2+), fehérjék, stb.
baktériumok letapadása, konzorcium létrehozása
biofilm leszakadása (disszemináció) planktonikus
30. Biofilm - II Kimutatása
elektronmikroszkóppal
üvegcso falán, festéssel
Antibiotikum rezisztencia nagyobb
penetráció gátolt
szaporodás lassúbb
géntranszfer sokkal intenzívebb (+leszakadáskor elviszik!)
31. Antibiotikum rezisztencia: biofilm versus planktonikus fázis
32. Biofilm - III Kórképek biofilmmel:
natív szívbillentyu endocarditis (Streptococcus, S. aureus, Enterococcus , Candida, Aspergillus)
beültetett eszközök: érpálya kanülök (pl. centrális vénás, perifériás), húgyúti katéterek (Enterococcus, Gram -, Pseudomonas, Serratia, Citrobacter), mubillentyu, intrauterin eszközök, fogászati implantátumok (titánium), kontakt lencse, beültetett szemlencse, csípoprotézis, térdprotézis,
krónikus bakteriális prostatitis
CF (cisztikus fibrózis): Pseudomonas aeruginosa, S. aureus, Burkholderia, H. influenzae (alginát képzés!)
periodontitis, fog plaque