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1. Cuidados Com Sonda gástrica E entérica Profª MS. Fátima Rejane AyresFlorentino
2. Conceito Introdução de uma sonda de material flexível dentro do aparelho digestivo.
Tipos
Naso ou orogástrica, nasoenteral ou oroenteral.
Variam conforme as indicações
3. Sondas (SNG)
4. Sondas (SNE)
5. Características Levine- gástrica (naso ou oro)
Plástica, semi-rígida, translúcida, orifícios laterais, baixo custo, localização (estômago), calibre e permanência.
Nasoenteral- Dobb-Hoff (naso ou oroenteral)
Flexível, custo, pendulo na ponta, radiopaca, orifícios laterais, mandril, localização (intestino), permanência
6. Sonda Orogástrica/Nasogástrica/ Finalidade Drenagem
Prevenção da distensão abdominal
Fins diagnósticos
Alimentação por 48 horas
Administração de medicações
Controle de drenagem e/ou sangramento
7. Sonda Oroentérica/Nasoentérica Finalidade Alimentação a pacientes que estão impossibilitados de alimentar-se por VO por um longo período.
8. Procedimento/Fundamentação Certificar-se que a sonda está bem posicionada.
Após administração de qual quer alimento ou medicação lavar a sonda com 20 ml de água morna (adulto), 10 ml (criança) 5 ml (lactentes) 3ml (RN Para evitar administração de alimentos ou medicações via pulmonar.
Para evitar obstrução da sonda.
9. Procedimento/Fundamentação Alimentar paciente sempre com cabeceira elevada .
Manter a sonda pelo período que o paciente precisar.
Para diminuir o risco de aspiração.
Não há necessidade de de trocá-la exceto se houver obstrução da mesma.
10. Procedimento/Fundamentação Trocar fixação a cada 12 horas.
Antes de administrar qualquer alimentação ou medicamento verificar posicionamento da sonda. Para evitar que a mesma se desprenda e saia de seu posição.
Para evitar o risco de pneumonia aspirativa
11. Cuidados Com Dreno De Tórax
12. Drenagem Torácica
13. Procedimento/Fundamentação Manter curativo oclusivo.
Manter drenagem em selo d’ água (SF) com a haste submersa em 2,5 cm . Para evitar sangramento ou extravasamento de secreção serosa.
A água (SF) age como um selo impede que o ar volte para o espaço pleural.
14. Procedimento/Fundamentação Colocar no frasco coletor 500 ml de SF.
Marcar no frasco volume de soro, data, hora e assinatura . Para manter a haste submersa em 2,5 cm.
A fim de medir a quantidade de perda de líquido, e a rapidez que está sendo drenado.
15. Procedimento/Fundamentação Medir drenagem a cada 12 horas, exceto em grandes sangramentos.
O dreno deve permanecer em média 72 horas Para avaliar o estado hemodinâmico do paciente.
Para evitar infecções, pois é um procedimento invasivo.
16. Procedimento/Fundamentação Não pinçar o dreno para transportar o paciente.
Pinçar o dreno somente no momento de medir a drenagem, realizado por duas pessoas. Para evitar iatrogenias.
Para impedir que haja entrada de ar para o espaço pleural no momento da abertura do frasco.
17. Procedimento/Fundamentação Sempre usar luvas de procedimento ao medir drenagem.
Realizar movimentos de ordenha no dreno a cada 6 horas e QN. Medidas de precauções universais.
Para evitar a formação de coágulos e desprender grumos das paredes do dreno.
18. DRENO DE PENROSE
19. DRENOS DE KEHR
20. Recomendações para prevenção de infecção de corrente sanguínea associada a cateteres vasculares
21. Os quatro tipos de infecções mais frequentes As bacteremias juntamente com as pneumonias, infecções cirúrgicas e urinárias .
No que se refere a custos hospitalares são as que demandam maiores valores e prolonga a internação em média 11 dias.
22. Como ocorre? A disseminação de microorganismos de um cateter intravascular para a corrente sanguínea é o resultado de complexo processo que inclui:
a contaminação do cateter;
aderência dos microorganismos à superfície externa ou interna do cateter;
multiplicação dos microorganismos;
passagem à corrente sanguínea.
23. Quais as principais fontes de contaminação do cateter vascular? São:
a microbiota cutânea do paciente;
conexões (dânula) do cateter
mãos contaminadas da equipe no uso do sistema de infusão;
fonte hematogênica por foco infeccioso à distância;
infusões contaminadas por contaminação no processo de fabricação ;
ou durante a manipulação no hospital da solução a ser infundida.
24. Medidas de prevenção
Dê preferência aos cateteres de teflon, poliuretano e silicone aos de polipropileno e polivinil.
Cateteres de menor calibre e de lúmen único são mais indicados que cateteres de múltiplo lúmen, no que se refere a infecção.
Cateteres inseridos na subclávia tem menos complicações infecciosas que a inserção nas veias jugular ou femural
25. Equipe de inserção de cateter A implantação e uma equipe específica para inserção do cateter reduz significativamente a ocorrência de infecção.
Treinamento do pessoal para inserção e cuidados de manutenção devem ser desenvolvidos
26. Lavagem e antissepsia das mãos para inserção do cateter Cateteres centrais – antissepsia das mãos com clorexidina degermante ou lavagem das mãos com sabão neutro seguida de aplicação de àlcool glicerinado gel
Cateter central – paramentação cirúrgica
Cateter periférico – luva de procedimento e técnica asséptica
27. Antissepsia da pele Cateter central exige – 60 segundos de aplicação de antisséptico na pele (Clorexidina alcoólica 0,5%).
Cateter periférico exige – 30 segundos de aplicação de antisséptico na pele. Use Álcool 70%
- Observar validade nos frascos de solução de antissépticos.
- Obedeça a rotina de troca dos frascos
28. Acesso Venoso periférico
29. Troca do cateter Os cateteres centrais devem ser retirados o mais cedo possível e não tem recomendação de troca rotineira.
Trocar apenas quando suspeita de infectado. Inspecionar diariamente o local de inserção
Cateteres periféricos devem ser trocados a cada 96 horas e os inseridos em condições de emergência trocar nas primeiras 48 horas
30. Tipos de curativos em cateter central Lavar o local de inserção com SF 0,9% e aplicar álcool 70%;
Usar gaze estéril e micropore;
Trocar a cada 48 horas ou quando sujo, úmido u frouxo;
Não colocar adesivo ao longo do cateter.
31. ATENÇÃO!!! Curativo transparente deve ser colocado sem sangramento no local da inserção;
Preferir sua colocação após o primeiro curativo com gaze;
Dever ser trocado a cada 7 dias
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32. Troca de equipos e dânulas Equipo e dânulas – devem ser juntamente trocados a cada 72 horas.
Equipos de sangue, hemoderivados, emulsão lipídica e NPT devem ser trocados a cada 24 horas.
- Lavar as mãos entes de abrir o sistema
33. Cuidados com infusões Inspecionar visualmente contra luz antes de infundir as soluções.
Evitar “respiros”, usar bolsas flexíveis em sistema fechado.
Solução de NPT deve durar o máximo 24 horas.
Solução em geral não devem durar mais de 24 horas em sistema aberto de infusão .
Par PVC usar frasco de 125 ml para durar menos.
34. Coleta de hemocultura e ponta de cateter Coletar hemocultura em duas amostras de sangue periférico com intervalo de 30 minutos, preferencialmente antes da febre ou no início da elevação da temperatura.
Usar técnica asséptica rigorosa
A ponta de cateter deve ser coletada após antissepsia com álcool 70% no local de inserção com técnica asséptica em frasco estéril
35. Reação pirogênica Trocar todo sistema e enviar imediatamente para cultura;
Aponta do equipo e do cateter periférico devem ser protegidos com material estéril.
Quando for cateter central enviar apenas o equipo e a solução;
Coletar duas hemoculturas de local distante do sítio de infusão;
Preencher formulário e enviar ao SCIH.
36. Referências SMELTZER, S.;BARE, B. G. Tratado de enfermagem médico-cirúrgica. Rio de Janeiro: Guanabara Koogan, 1998
OPERMANN,C. Recomendações para prevenção de infecções hospitalares. Porto Alegre, 2006.
37. Terapia Intravenosa Soluções utilizadas Soro Fisiológico a 0,9% (SF)
Soluções salinas são as únicas que podem ser usadas com todos hemoderivados;
Mais utilizado para rediluição de medicamentos
Observar compatibilidade na diluição de medicamentos
Soro Glicosado a 5% ou SG a 10% ou SG a 20%
- SG 5% é muito usado como terapia intravenosa
Observar compatibilidade na rediluição de medicamentos
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38. Terapia Intravenosa Soluções utilizadas
Ringer ou Ringer lactato
Reposição de fluídos e eletrólitos extracelulares
Antes e após cirurgias, hidratação
Glico-fisiológico
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39. Terapia Intravenosa Eletrólitos Cálcio (gluconato de cálcio 10%)
Essencial em processos vitais:
contração muscular;
Função cardíaca;
Transmissão de impulsos nervosos;
Coagulação sanguínea
(FISCHBACH, 2002)
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40. Terapia Intravenosa Eletrólitos mais utilizados Cloro (cloreto de sódio a 20%)
Influencia a pressão osmótica, equilíbrio ácido-básico e hídrico;
Grande perda de cloretos:
diurese maciça;
Vômitos;
Diarréia;
Fístula intestinal.
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41. Terapia Intravenosa Eletrólitos Magnésio (sulfato de magnésio a 25%)
Ossos, cartilagens, intracelular;
Junto com sódio, potássio e cálcio regula a irritabilidade neuromuscular e o mecanismo da coagulação.
(FISCHBACH, 2002)
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42. Terapia Intravenosa Eletrólitos Potássio
Principal eletrólito do líquido intracelular;
Funções:
Condução nervosa, função muscular, equilíbrio
ácido-básico, pressão osmótica
Na + Ca + Mg + K:
Controlam contratilidade cardíaca
Perdas:
Uso de diuréticos, corticóides, digitálicos, antibióticos, vômitos, suor, diarréia, feridas com drenagem, queimaduras graves (FISCHBACH, 2002)
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43. Terapia Intravenosa Eletrólitos Potássio
Abrir e fechar o punho + garroteamento para coleta de sangue aumenta de 10 a 20% o nível de K:
não garrotear , ou então,
se garrotear, soltar o garrote logo que a agulha penetra na veia
Solução Cloreto de Potássio (KCL a 10%)
Nunca é administrado em bolus, infusão deve ser lenta (“push”)
Extremamente irritante para o tecido subcutâneo
Atenção à função renal
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44. Terapia Intravenosa Eletrólitos mais utilizados Sódio (Cloreto de sódio a 0,9% 0u 20%)
Funções:
Pressão osmótica e equilíbrio ácido-básico, transmissão de impulsos nervosos,manutenção do volume extracelular
Perda de Na:
Queimaduras graves, diarréia intensa, vômitos, sudorese, uso de diuréticos, intoxicação hídrica e edema (dilucional)
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45. 1 gota = 3 microgotas
Observar o fator de gotejamento
do soro:
1ml = 10 gotas
1ml = 15 gotas
1ml = 20 gotas
(PHILLIPS, 2001)
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46. 26/5/2012 46
47. 26/5/2012 47
48. SG 5% 1000 ml EV 6/6h
Quantas gotas deverão correr, em um minuto, para administrar 1000ml de SG 5% de 6/6 horas
V = 1000ml
T = 6horas
Então:
Nº gotas/min= 1000 = 1000 = 55,5 gotas/min
6 x 3 18
Resposta: deverão correr 56 gotas/min 26/5/2012 48
49. Quantas microgotas deverão correr em um minuto, para administrar 300 ml de SF a 0,9% em 4 horas?
V = 300 ml
T = 4 horas
Então:
Nº mgt/min= 300 = 75 mgts/min
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Resposta: deverão correr 75 microgotas/min
26/5/2012 49
50. Quantas microgotas deverão correr em um minuto, para administrar 300 ml de SF a 0,9% em 4 horas?
V = 300 ml
T = 4 horas
Então:
Nº mgt/min= 300 = 75 mgts/min = 75 ml/h
4
Resposta: deverão correr 75 microgotas/min
E se fosse correr em gotas, quantas seriam em um minuto?
75 mgts/min / 3 = 25 gotas/min
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51. Devemos administrar o seguinte soro:
SG 5% - 400ml
NaCl 20% - 20ml
KCl 10% - 10ml
Complexo B- 2ml
Vit C 10% - 5ml
A quantas gotas deverá correr esse soro?
V= 400+20+10+2+7=437 ml
T= 6 horas
Nºgotas/min= 437 = 24,2 = 24 gotas/min
6x3
O soro foi instalado às 10 horas, qual será o seu horário de término?
24 gotas/min x 3 = 72 mgts/min = 72 ml/h
437 ml / 72 ml/h = 6,...
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52. ATENÇÃO ! ! ! No caso de um acidente durante a punção venosa, comunicar e seguir o protocolo da instituição. Lembre-se: nunca recoloque o protetor em uma agulha usada. Descarte o material em recipiente apropriado (descarpac).
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