840 likes | 1.04k Views
Bioinformatika - Proteomika. Medzihradszky (Fölkl) Katalin Dept. of Pharmaceutical Chemistry, University of California San Francisco és Proteomikai Kutatócsoport, SzBK e-mail: folkl @ cgl.ucsf.edu. Bioinformatika úgy általában. adatbázisok felépítése
E N D
Bioinformatika - Proteomika Medzihradszky (Fölkl) Katalin Dept. of Pharmaceutical Chemistry, University of California San Francisco és Proteomikai Kutatócsoport, SzBK e-mail: folkl@cgl.ucsf.edu
Bioinformatika úgy általában • adatbázisok felépítése • ezen adathalmazok statisztikai analízise, matematikai értelmezése • szabályszerűségek meghatározása • szabályok hasznosítása – predikciók pl. funkcióra, rokonságra, eredetre, szerkezetre stb.
Bioinformatika úgy általában • „összehordott” adatokból építkezünk • többnyire elmélet eleinte • a gyakorlati hasznosítás majd a végén jön • persze ez visszahat az elméletre
Mit lehet kiaknázni? • genomiális adatbázisok • fehérje szekvencia adatbázisok • fehérje 3D szerkezeti adatbázisok • stb, stb Meghatározó faktor: Mennyire megbízhatóak az adatok?
Proteomika A sejt fehérjetartalmának kvalitatív és kvantitatív jellemzése Mi van jelen? Mennyi? Milyen formában? Lokalizáció? Kölcsönhatások? Partnerek?
Problémák • állandó dinamikus változások • hatalmas mennyiségi különbségek • igen eltérő fizikai tulajdonságok – még ugyanarra a géntermékre is
Még mindig „problémák” Poszt-transzlációs módosítások Idő-, faj-, állapot-, lokalizáció- stb. -függő • permanens vs. dinamikus • teljes vs. részleges • jelentős vs. csekély méretváltozás • hidrofil • hidrofób Nem árt érteni a biológiához!
Láthatóvá tenni a komplexitást... Frakcionálni kell ! 1D-, 2D-, multidimenziós módszerek
1D-SDS-PAGE * Minden belemegy a gélbe, de kicsi a felbontás. * Várhatóan fehérje-elegyeket kell analizálni
2D elfo 1. dimenzió: izoelektromos fókuszálás → pI szerint - pH 3-10 DE savas vagy bázikus fehérjék NEMfókuszálódnak membrán-fehérjék kicsapódnak – ionos detergens nem használható 2. dimenzió: SDS-PAGE
1. spot 7. spot 8. spot 5. spot 2. spot 9. spot 3. spot 6. spot 4. spot pH: 3 4 5 6 7 8 9 10 2 proteins 2 proteins 3 proteins 3 proteins 2 proteins 1 protein 1 protein 1 protein 4 proteins
2D elfo másképpen 1. dimenzió: 16 BAC-PAGE (pozitív „fejű” detergens) 2. dimenzió: SDS-PAGE Minden belemegy a gélbe, de átlósan frakcionálódik – kis felbontás
Speciális 2D elválasztás 16-BAC S D S Pros35 10/14 (71%) 33% Pros7 34/36 (94%) 63% Pros6 12/12 (100%) 42% Pros28.1 14/21 (66%) 54% Pros29 19/23 (83%) 59% Pros2 13/15 (86%) 42% GC12000 13/14 (93%) 35% ProsMA5 22/44 (50%) 56% Pros25 12/15 (80%) 50% Pros3 18/24 (75%) 53% Pros26 6/15 (40%) 46% Pros5 11/12 (92%) 26% GC17331 11/23 (47%) 46% l(2)05070 15/19 (79%) 72%
Festés • Commassie Brillian Blue – kvanti • Ezüst – érzékenyebb, de NEM kvanti Trükkök: • funkciós csoportra specifikus festés • differenciál festés
2D-kromatográfia 1. dimenzió: kation - ioncsere 2. dimenzió: fordított fázisú HPLC Követés: 215 nm-en → peptidkötés Nyilván semmi hidrofób nem érvényesül ilyen körülmények között... Reprodukálhatóság degradálódik az oszlop életkorával!
Ki is kell találni mit is válogattunk szét! • Edman szekvenálás → N-terminuson blokkolt fehérjékkel, keverékkel nem megy • Western-blot → tudni kell, hogy mit keresünk, és kell jó ellenanyag
alapötlet • Egy bizonyos fehérje adott specificitású enzimmel emésztve szekvenciájára jellemző hasítási termékeket fog produkálni • Ha a valóságos emésztményt az adatbázis „in-silico” eredményeivel összevetjük azonosítani tudjuk a fehérjét Az összehasonlítás alapja csak valami biztosan megjósolható és egyértelműen meghatároztató tulajdonság lehet: TÖMEG
A tömegspektrometria előnyei • alkalmazható keverékekre • blokkolt fehérjékre is • kovalens módosítások azonosíthatóak
Detektálási érzékenység • Edman szekvenálás – kb. 1 pmól - 10-12 M • MS – kb. 5-50 fmól - 5x 10-15 - 10-14 M • Western blot –kevesebb, mint 10-15 M
MS-alapú Proteomika • Fordított bioinformatika: mérési adatok + adatbázisok + algoritmusok →biológiai eredmények Tudni illik valamit az analitikai módszerről
Mass Spectrometry 101 • Ionokat mérünk Matrix Assisted Laser Desorption Ionization Electrospray Ionization – többszörösen töltött ionok • Nagy vákuumban • quadrupole, Time-of-Flight, ioncsapda MS →MH+ adatok MS-MS alias CID, CAD, PSD ... → szekvencia info
Monoizotópos tömeg csakC12, H1, N14, O16 and S32 ← 1C13 2 C13
3+ töltésű peptid, nagy felbontás 492.26522 Δ = 0.33426 = kb. 1/3 492.59948
Tömegmérés pontossága 0.1 Da mérési hiba egész jó 2 kDa-nál, DE katasztrófális egy kis molekulánál Relatív értéket adjunk meg! pars per million
Milyen pontosan tudunk mérni? belső standarddal 20 ppm-en belül ± 0.02 Da @ 1000 külső standarddal 200 ppm-en belül ± 0.2 Da @ 1000 intakt fehérjékre 0.1%-on belül ± 100 Da @ 10 000 Gyenge jeleknél nem érvényesül a Gauss eloszlás!
Ha ez így megy, minek egyáltalán emésztgetni? Miért nem mérjük az intakt fehérjéket? preparatív és interpretív akadályok
Minta-előkészítés Legyen a fehérje hozzáférhető a hasításra: → denaturálás → diszulfid-hidak bontása Emésztés, kémiai hasítás
Specifikus hasítások • tripszin - Lys↓ Arg ↓ • endoproteáz Lys-C - Lys ↓ • endoproteáz Glu-C - Glu ↓ (Asp ↓) • endoproteáz Asp-N - ↓Asp (↓Glu) pH kb. 7.5 - 8 • CNBr (+75 %-os TFA) - Met ↓
Az analízis • Egybemérjünk vagy frakcionáljunk? MALDI vs ESIMS LC-MALDI LC-ESIMS
Mennyire kellene pontosan mérni a peptideket ? MH+ = 1296.4 ± 0.3 ppm • 9 különböző aminosav-összetétel • 36292 különböző szekvencia • 3 különböző elemi összetétel Ile/Leu ThrVal/SerLeu GlyGlu/AlaAsp
Miért kell még szekvencia info? • Keverékek • Kovalens módosítások • Izoformák • Splice variants • És ha nincs bent az adatbázisban?
Hogyan tegyünk szert a szükséges információra? Feladat: → meghatározni a komponensek tömegét → egyet fizikailag elkülöníteni → „szétverni” Műszeres megoldás: tandem tömegspektrometria, ionkapu, ioncsapda Fragmentálás: post-source decay (PSD), ütközéses aktiválás (CID/CAD), elektron-befogás (ECD)
Peptid fragmentáció NH2-CH(R1)-CO-NH-CH(R2)-CO~ ~CO-NH-CH(Rn)-COOH yn-2 bn-1 yn-1 y1 b2 bi=S gyöksúly + 1 (72) 159 256 371 534 Ala-Ser-Pro-Asp-Tyr-Arg 637 550 453 338 175 yi = S gyöksúly + 19 A fragmentáció módszer- és készülék-függő!
60.04 S 130.09 y1-NH3 276.16 y2 399.21 b3+H2O 528.25 b4+H2O 70.07 R 138.07 H 277.14 HR-NH3 406.18 HRE-NH3 552.29 y4-NH3 84.08 K 147.11 y1 286.15 RE 415.23 y3-NH3 556.26 m3 87.09 R 197.10 a2 294.17 HR 423.21 HRE 569.32 y4 100.09 R 207.09 b2-H2O 336.18 a3-NH3 432.26 y3 575.30 m2 101.11 K 225.10 b2 353.20 a3 465.22 a4-NH3 583.32 m4 102.06 E 258.16 RE-28 363.19 b3-H2O 482.25 a4 584.27 m5 110.07 H 259.13 y2-NH3 364.17 b3-NH3 492.23 b4-H2O 625.33 m1 112.09 R 266.17 HR-28 381.20 b3 493.22 b4-NH3 129.10 K 269.12 RE-NH3 395.22 HRE-28 510.24 b4 SHREK - Elméleti MALDI-CID spektrum – MS product
131.0946 z1 242.1253 c2 353.2050 a3 416.2383 z3 527.2690 c4 197.1039 a2 260.1372 z2 398.2264 c3 482.2476 a4 553.2972 z4 SHREK – elméleti ECD fragmensek Elméleti „spektrum”: → lehetséges fragmensek, egyenlő intenzitással