Generalidades del análisis de aspirado de médula ósea

1. Generalidades del análisis de aspirado de médula ósea

2. Celularidad • Se puede determinar por: • Biopsia (más fidedigno) • Aspirado • Depende de: • Edad del paciente • Sitio de donde es tomada la muestra • Se expresa como el % de una sección ocupada por tejido hematopoyético. • Celularidad puede ser normal entre 20 y 80% (excepto en extremos de la vida).

3. Tendencia de la celularidad

4. Celularidad normal (biopsia)

5. Celularidad normal (aspirado)

6. Necesidad de adecuada profundidad para determinar celularidad

7. Eritropoyesis

8. Isla eritroide

9. Estadios de la eritropoyesis • Proeritroblastos: • Núcleo grande y redondeado, citoplasma muy basofílico, con zona perinuclear pálida (Golgi). Núcleo granular fino con varios nucléolos. • Eritroblastos tempranos: • Más pequeños y numerosos que proeritrob. N:C menor. Cromatina granular punteada. Sin nucléolo visible. Halo perinuclear.

10. Estadios de eritropoyesis • Eritroblastos intermedios: • Más pequeños, menor N:C. Citoplasma menos basofílico, moderado agrupamiento de cromatina. • Eritroblastos tardíos: • Más pequeños y numerosos.Levemente más grandes que GR maduros. Menor N:C y más condensación de cromatina.Menos basofilia citoplasmática y tinte rosa (policromatofílico).

11. Serie eritroide early, intermediate and late erythroblasts and a lymphocyte

12. Serie eritroide a proerythroblast, intermediate erythroblast, four late erythroblasts, a myelocyte, large and small lymphocytes and a neutrophil

13. Granulopoyesis • Mieloblasto • Tamaño similar a proeritroblasto, de forma más irregular. Citoplasma ligeramente basofílico. Cromatina difusa y varios nucleólos. Sin gránulos. • Promielocito • Más grandes que mieloblastosy citoplasmamásbasofílico. Núcleo levemente hendido, nucleolado, zona de Golgi y gránulos primarios azurofílicos que son rojos-púrpura.

14. Granulopoyesis • Mielocito • Más pequeños que promielos. Variables en tamaño. Condensación parcial de cromatina sin nucléolo. Menos basofilia en citoplasma, con gránulos específicos. • Metamielocitos • De 10–12 μm. Núcleo en forma de U. • Bandas. • Granulocitopolimorfonuclear.

15. Granulopoyesis a myeloblast, three neutrophils and two monocytes

16. Granulopoyesis a myeloblast and a promyelocyte (centre), a myelocyte (lower right), a metamyelocyte, band forms, a neutrophil and a late erythroblast

17. Monocitopoyesis • Monocitos derivados de precursor granulocítico/monocítico. • Monoblastos • Más grande que mieloblasto, citoplasma abundante con diversa basofilia y gran núcleo. • Promonocitos • Tamaño similar a promielocitos. Gránulos citoplásmicos y lobulación nuclear.

18. Monocitopoyesis • Monocitos • Núcleo lobulado y abundante citoplasma levemente basofílico; este puede contener pequeños gránulos azurofílicos (vidrio esmerilado). • Macrófagos • Núcleo irregular, N:C bajo, citoplasma voluminoso, leve basofilia. Núcleos varían dependiendo del estado de maduración.

19. Monocitopoyesis • Los monocitos y sus precursores son bastante infrecuentes entre células medulares, ya que son liberados rápidamente al torrente sanguíneo. • Los macrófagos (histiocitos) son más abundantes en la médula.

20. Macrófago con restos celulares

21. Megacariopoyesis • Megacariocitos sufren endoreduplicaciónal madurar alcanzando de 30–160 μm, con mucha heterogeneidad nuclear. • Pueden clasificarse según ploidía, según características nucleares y citoplasmáticas. • Grupo I: Citop muy basófilo, N:C muy alto. • Grupo II: Citop menos basófilo, N:C menor. • Grupo III: Citop poca basofilia, muchos gránulos azurofílicos. Células maduras, capaz de producir plaquetas y no dividirse más.

22. Megacariocito grupo I

23. Megacariopoyesis • Relación entre ploidía y estado de maduración. • Núcleo de los megacariocitos. • Unidos por hilos de cromatina. • Pocos son no lobulados o multinucleados.

24. Megacariocito tardío

25. Trombopoyesis • Aumento en la demanda puede aumentar número de ploidíay tamaño celular. • Se debe determinar número y morfología de los megas: • Pueden estar: • Disminuidos • Normales • Hipercelulares • Megacariocitos pueden comer otras células(emperipolesis).

26. Megacariocito núcleo lobulado

27. Emperipolesis

28. Mastocitos • Derivadas de progenitores mieloides multipotenciales. • Células ovaladas o elongadas, núcleo central, pequeño, redondo u oval. • Citoplasma empacado de gránulos azul oscuro. • Diferentes de basófilos por no tener núcleo lobulado y cromatina más laxa. • Son poco frecuentes.

29. Mastocito

30. Osteoblastos y osteoclastos • Osteoblastos: • Mononucleares, núcleo excéntrico, Golgi no adyacente al núcleo, citoplasma basófilo. • Cromatina menos densa que células plasmáticas. • Poco comunes, pero al aparecer generalmente lo hacen en grupos.

31. Osteoblastos

32. Osteoblastos y osteoclastos • Osteoclastos: • Células multinucleadas gigantes. • Núcleos separados claramente. • Citoplasma voluminoso con gránulos azurofílicos. • Más frecuentes en niños.

33. Osteoclasto

34. Células grasas

35. Linfocitos • T son más maduros. • B son más inmaduros. • Células pequeñas con relación N:C alta y citoplasma escaso levemente basofílico. • Núcleo con leve condensación de cromatina. • Aprox 10% de cél nucleadas (mayoría son CTL).

36. Células plasmáticas • Raras en M.O. (<1%). • Núcleo excéntrico, citoplasma de moderada basofilia y Golgi prominente. • Condensación gruesa de cromatina. • Ocasionalmente vacuoladas.

37. Células plasmáticas

38. Composición celular de M.O. • Influenciado por volumen aspirado. • Conteo ideal de primeras dos gotas de aspirado. • Cambiar de jeringa si se necesitan más análisis. • Debe realizarse conteo celular: • 500 células. • Determinar relación M:E.(influenciado por volumen de aspirado): • Eritropoyesis. • Granulopoyesis.

39. Composición de la M.O. en el adulto

40. Interpretación del aspirado • Permite determinar citomorfología. • Se debe tener información del paciente. • Haber analizado sangre periférica. • Permite orientar la histología. • Examinar de 2 a 3 extendidos. • Iniciar a bajo poder e ir aumentando. • Determinar detalladamente número y morfología.

41. Interpretación del aspirado • Analizar tinción de hierro a bajo poder para visualizar reservas. • Aumentar el poder para hallazgos anormales. • Granulación siderótica. • Sideroblastos.

42. Reporte del aspirado • Tomar en cuenta detalles clínicos y hemograma. • Incluir: • Celularidad. • Relación M:E. • Descripción de cada línea. • Descripción de reservas de hierro. • Resumen corto con hallazgos significativos con interpretación. • Diferenciar hechos de opiniones.

43. Artefactos • Inducidos por la biopsia o procesamiento de laboratorio. • Material o tejido extraño. • Consecuencia del daño tisular producido previamente por la biopsia.

44. Artefactos en la citología • Procesamiento: • Falta de secado antes de fijación y tinción. • Efecto de fuga del citoplasma y mala definición de este. • Almacenamiento prolongado. • Tinte azul oscuro en el extendido. • Mala fijación/tinción.

45. Fijación antes de secado

46. Elementos extraños Células endoteliales Células epiteliales

47. Cristales de talco de guantes

48. Al laboratorio…