1 / 35

Sissejuhatus Kromatograafiasse

Sissejuhatus Kromatograafiasse. S ügis 20 12. KROMATOGRAAFIA. kromatograafia on meetod, mille abil saab segusid üksikuteks komponentideks lahutada kromatograafia teostatakse kolonnis, mis on täidetud statsionaarse (liikumatu) faasiga läbi kolonni voolab mobiilne (liikuv) faas.

pembroke
Download Presentation

Sissejuhatus Kromatograafiasse

An Image/Link below is provided (as is) to download presentation Download Policy: Content on the Website is provided to you AS IS for your information and personal use and may not be sold / licensed / shared on other websites without getting consent from its author. Content is provided to you AS IS for your information and personal use only. Download presentation by click this link. While downloading, if for some reason you are not able to download a presentation, the publisher may have deleted the file from their server. During download, if you can't get a presentation, the file might be deleted by the publisher.

E N D

Presentation Transcript


  1. Sissejuhatus Kromatograafiasse Sügis 2012

  2. KROMATOGRAAFIA • kromatograafia on meetod, mille abil saab segusid üksikuteks komponentideks lahutada • kromatograafia teostatakse kolonnis, mis on täidetud statsionaarse (liikumatu) faasiga • läbi kolonni voolab mobiilne (liikuv) faas. • proovi sisestamisel kolonni jaotuvad proovi komponendid mobiilse ja statsionaarse faasi vahel • ainete üksteisest lahutumine pŏhineb erinevate analüütide erineval jaotumisel statsionaarse ja mobiilse faasi vahel • kromatograafia avastas 1903 a. Tsvett (vene/itaalia päritoluga keemik, töötas Varssavis, Tartus ja Voronezis. Kaasaegse variandi leiutasid Martin ja Snyge (Nobeli preemia 1953 a.) • kasutamine: 30% kôigist analüüsidest tehakse kromatograafia abil • Kromatograafilised meetodid: • gaasikromatograafia (gaas/vedelik, gaas/adsorbtsioon) • vedelikkromatograafia (vedelik/vedelik, vedelik/adsorbtsioon, ioonvahetus, eksklusioon, affiinsus, ŏhukese kihi kromatograafia)

  3. Kromatogrammi saamine • Proov lahustatakse mobiilses faasis. • Proov viiakse kolonni ühte otsa. • Mobiilne faas kannab proovitsooni läbi kolonni. • Osakesed jaotuvad palju kordi mobiilse ja statsionaarse faasi vahel. • Need proovi komponendid, mis interakteeruvad statsionaarse faasiga tugevamini väljuvad kolonnist hiljem kui need osakesed, mis interakteeruvad nŏrgemini. • Ideaaljuhul on pärast teatud aja möödumist kŏik proovi komponendid üksteisest lahutunud ja jŏuavad erinevatel ajamomentidel kolonni teise otsa, kus nad detekteeritakse. • Saadud detektorisignaali (analüüsiaja vŏi mobiilse faasi ruumala funktsioonina) nimetatakse kromatogrammiks.

  4. Piigi kuju funktsioon

  5. Kaks efekti: • erinevad ained lahutuvad üksteisest kromatograafilise analüüsi käigus, • ainetsoonid laienevad. • Piikide laienemine vŏib hävitada lahutuvuse. • Lahutuvuse parandamiseks tuleks: • muuta selektiivselt migratsiooniaegu • suruda ainetsoonide laienemist maha

  6. Põhimõisteid • Kromatograafilise lahutamise pôhiidee: mitmekordne sorbtsioon/desorbtsioon • Mobiilne faas e. eluent • Statsionaarne faas e. kolonni täidismaterjal • Aine retensiooniruumala; mobiilse faasi ruumala, mis on vajalik poole aine koguse elueerimiseks kolonnist

  7. Tähiste selgitused VR - retentsiooniruumala Vm - mobiilse (liikuva) faasi ruumala VS - statsionaarse (liikumatu) faasi ruumala K - jaotuskonstant (näitab kuidas aine jaguneb mobiilse ja statsionaarse faasi vahel) k' - mahtuvusfaktor (näitab aine kontsentratsiooni erinevust mobiilses ja statsionaarses faasis)  - mobiilse ja statsionaarse faasi ruumalade suhe CS - aine kontsentratsioon statsionaarses faasis Cm - aine kontsentratsioon mobiilses faasis F, u - liikuva faasi kiirus tR - aine retentsiooniaeg (aeg, mille jooksul elueerub pool ainest) tm - "surnud aeg" (aeg, mille jooksul elueeruvad ained, mis ei sorbeeru tahkesse faasi) N -efektiivsus e. teoreetiliste taldrikute arv  - kromatograafilise tsooni laienemist näitav tegur H - teoreetilise taldriku kõrgus R - lahutuvus  - selektiivsus

  8. Kromatograafia pôhivalemid Retentsiooniaeg tR tR=tm(1+k')

  9. Efektiivsus ja selektiivsus

  10. Van Deemteri võrrand:

  11. van Deemteri võrrandi üldkuju • H=A+B/u+(Cm+Cs)u • A - aine molekulide teepikkuste erinevus • (kapillaarkolonnide korral paraboolne vooluproofil) • B - ainetsooni difusiooniline laienemine kolonnis • Cm - massivahetus liikuvas faasis • Cs - massivahetus liikumatu ja liikuva faasi vahel

  12. Vedelikkromatograafia (HPLC) • HPLC mobiilne faas on vedelik • gaasikromatograafia piirid: MW=400, (20% ainetest); • vedelikkromatograafia objektid: makromolekulid, ioonsed ühendid, labiilsed looduslikud ühendid • Kromatograafilisi lahutamisprotsessi eesmärk vŏib olla: • kvalitatiivne analüüs (ret. aegade vŏrdlus, standardi lisamine) • kvantitatiivne analüüs (kalibratsioon) • preparatiivne lahutamine (järgneb analüüs teise meetodiga, puhta aine saamine) • Mobiilset faasi vedelikkromatograafias kutsutakse sageli ka eluendiks.

  13. Optimiseerimine • Vedelikromatograafiliste analüüside optimiseerimine taandub sageli ŏige mobiilse faasi leidmisele. • Mobiilse faasi puhul on olulisteks parameetriteks: • viskoosus (väiksema viskoossusega solvendid pŏhjustavad kolonnis väiksemaid rŏhkusid) • keemistemperatuur (madala keemistemperatuuriga solventidest on kergem vabaneda) • sobivus detektoriga (madal UV-neelduvus UV detektori puhul, etc.) • mürgisus

  14. Eelistatud solvendid:

  15. Eluendid • Vedelikkromatograafias kasutatavad eluendid on sageli 2 vŏi enama solvendi segu. Eluendi koostis mŏjutab nii analüütide retentsiooniaegu kui selektiivsuskoefitsienti. • Mida suurem on tugevama solvendi kontsentratsioon eluendis, seda kiiremini väljub aine kolonnist. • Selektiivsust saab samuti mŏjutada muutes eluendi koostist. • Selektiivsuste erinevuste eest vastutavad: vesiniksidemete teke, molekulidevahelised interaktsioonid. • Kui 2 piigi vaheline selektiivsus on 1 vŏi sellele lähedane suurus, siis on neid piike vŏimatu vŏi raske teineteisest lahutada. • Gradientelueerimine: eluendi koostise muutmine analüüsi käigus.

  16. Kolonnide tüübid

  17. Statsionaarne faas I • Kolonni täidise (statsionaarse faasi) tähtsamad näitajad: • Osakeste suurus: 3-20 micronit. Mida väiksem on statsionaarse faasi osake, seda suurem on efektiivsus, rŏhk kolonnis, lahutuvus. Suurused ei tohiks keskmisest üle 25% erineda. • Osakeste kuju: sfääriline vŏi ebakorrapärane. Efektiivsus ei sŏltu osakeste kujust, aga rŏhk kolonnis sŏltub.

  18. Statsionaarne faas II • Poorsus: osakesed on kas läbinisti poorsed vŏi kaetud poorse kihiga (pellikulaarsed). Pooride d=60-500 Ǻ. • Läbinisti poorsete osakeste juhul on kolonnide mahtuvus suurem, pellikulaarsete osakeste korral on efektiivsused kŏrgemad ja kolonnide läbitavused paremad. • Pind: kolonni retentsiooni ja selektiivsuse määravad liikumatu faasi funktsionaalrühmad. Proovi molekulid interakteeruvad funktsionaalrühmadega vesiniksideme tekkimise, dipool-dipool ja elektrostaatiliste interaktsioonide kaudu. • Kolonnide täidis vŏib olla looduslik (silikageel) vŏi modifitseeritud. • Vedelikromatograafia jagatakse kolonni täidiste järgi eriliikidesse. Erinevatel vedelikkromatograafia kolonnidel on erinev lahutusmehhanism ja rakendusalad.

  19. Sobiva kromatograafia alaliigi (statsionaarse faasi) valik sŏltub konkreetsest proovist MW<2000 Neutraalsed molekulid • Nŏrga polaarsusega molekulide puhul kasutatakse pööratud faasi kromatograafiat, liikuvaks faasiks on vesilahused • Keskmise vŏi tugeva polaarsusega molekulide puhul kasutatakse normaalfaasi kromatograafiat, liikuvaks faasiks on orgaanilised lahustid (n. heksaan) Ioonid • Anioonide puhul kasutatakse anioonvahetuse kromatograafiat vŏi ioon-paar kromatograafiat. Eluendiks on puhverlahused. • Katioonide puhul kasutatakse katioonvahetuse kromatograafiat vŏi ioon-paar kromatograafiat. Eluendiks on puhverlahused. MW>2000 Kasutatakse geelfiltratsiooni, ja afiinsuskromatograafiat. • Vees lahustuvate ainete puhul on eluendiks vesilahused. • Vees mittelahustuvate ainete puhul orgaanilised lahustid.

  20. Vedelikkromatograafi ehitus I • Eluendi pumbad: kolb-, süstal-, konstantse gaasirôhu pumbad; • rŏhud kuni 8000 psi • voolukiirused 0.2-10 ml/min • Dosaatorid • Kolonnid: standard-, väikese diameetriga-, eelkolonnid • Eelkolonnid on lühikesed (1-3 cm) ja odavad kolonnid, mis on täidetud sama statsionaarse faasiga kui vastav analüütiline lahutuskolonn. • Eelkolonnide mŏte on kinni püüda ained, mis pöördumatult adsorbeeruvad antud statsionaarsesse faasi.

  21. Vedelikkromatograafi ehitus II • Detektorid: UV-VIS fotomeetrid (fikseeritav, varieeritav, skaneeritav lainepikkus), fluorestsents, elektrokeemiline, refrakomeetriline, juhtivus, mass-spektromeetriline • Detektori ülesandeks on produtseerida elektriline signaal, mis oleks proportsionaalne proovi kontsentratsiooniga. • Detekteerimispiiriks loetakse kontsentratsiooni, mis annab mürast 3 korda suurema signaali. • Liiga suurtel kontsentratsioonidel muutub sŏltuvus kontsentratsiooni ja detektori signaali vahel mittelineaarseks. • Detektori lineaarne ulatus. • Detektori raku ehitus peaks minimiseerima mullide tekkimise vŏimalikkuse.

  22. Proovi ettevalmistus • Tahked ained tuleb sobivas solvendis lahustada. Parim solvent on eluent ise. • Kontsentreeritud proovid tuleb eelnevalt lahjendada. • Mŏnikord on proove vaja eelnevalt puhastada vŏi modifitseerida.

  23. Kolonni valik • kas proov lahustub eluendis, mis sobib antud statsionaarse faasiga, • kas analüüdid on ioonsed vŏi neutraalsed ühendid • milline on molekulmasside erinevus lahutatavate analüütide vahel • Kolonni valik sŏltub proovi struktuurist. Vees lahustuvaid aineid peaks analüüsima pööratud faasi kromatograafia abil. Ioonide jaoks sobib ioonvahetus- vŏi ioonpaarkromatograafia. Kui proovis sisaldub isomeere vŏi kui aine ei lahustu vees peaks esimene valik olema normaalfaasikromatograafia, jne.

  24. Detektori valik. • Enamus aineid absorbeerib UV kiirgust lainepikkuste vahemikus 190-220 nm. Paljud ained ka kŏrgematel lainepikkustel. Seetŏttu on esimene valik enamasti UV-detektor. Tuleb valida kŏigi huvipakkuvate komponentide jaoks optimaalne lainepikkus. • Kui proovi komponendid fluorestseeruvad ja on vaja määrata väga väikeseid kontsentratsioone tuleks kasutada fluorestsentdetektorit. • Refraktsiooniindeksi detektorit kasutatakse kui ükski teine detektori tüüp ei sobi.

  25. Eluendi valik. • Eluent peaks vŏimaldama saada mŏistlikud retentsiooniajad kŏigi huvipakkuvate analüütide jaoks (k’=1-20). • Kui ükski eluent seda ei vŏimalda, siis tuleb kasutada gradientelueerimist.

  26. Analüüsi optimiseerimine. • Kui lahutuvus (R) on enam kui piisav kŏigi huvipakkuvate proovi komponentide jaoks, siis on otstarbekas analüüsiaega vähendada kasutades lühemat kolonni vŏi suuremat voolukiirust. • Kui lahutus mingite huvipakkuvate komponentide jaoks on ebapiisav tuleks tŏsta efektiivsust (N), vähendades voolukiirust, suurendades kolonni pikkust vŏi kasutades peeneteralisemat täidist. • Kui lahutuvuse puudulikkus on tingitud liiga väikesest selektiivsusest, tuleb muuta eluendi koostist vŏi statsionaarset faasi.

  27. Vedelikkromatograafia erimeetodid • suurt osa lahutamises omab analüüdi vastasmôju mobiilse faasiga • lahutamise mehhanismid: vedelik/adsorbtsioon, vedelik/vedelik, ioon-paar, ioonvahetus, eksklusioon, afiinsus • täidiste tüübid: mittepoorsed klaasist kuulikesed, kaetud poorse kihiga; poorsed osakesed; makropoorsed polümeerid

  28. Normaalfaasi kromatograafia • Lahutamispõhimõte: mittepolaarne eluent/ polaarne statsionaarne faas • Kolonni täidis: kolonni täidisosakeste (reeglina silikageel) külge on keemiliselt seotud polaarsed funktsionaalrühmad (näiteks tsüaanorühmad). • Liikuv faas: orgaaniline lahusti (metanool, atseetonitriil). • Elueerumise järjekord polaarsuse kasvu järgi

  29. Pööratud faasi kromatograafia (reversed phase) • Polaarne mobiilne faas (vesi+modifikaator) ja mittepolaarne statsionaarne faas (C2 - C18) • Mehhanism: polaarsed molekulid lahustuvad paremini eluendis, kui statsionaarses faasis ja elueeruvad varem, kui mittepolaarsed molekulid, mis lahustuvad paremini statsionaarses faasis. • Elueerimise järjekord on "pööratud" vôrreldes normaalse faasiga. • Orgaaniliste modifikaatorite (metanool, atsetonitriil, tetrahüdrofuraan) lisamine muudab eluenti tugevamaks • Rakendatakse alifaatsete vôi aromaatsete rühmadega molekulide lahutamisel

  30. Ioonvahetuskromatograafia • kolonni täidisele on kantud laenguga rühmad, mis on neutraliseeritud vastasioonidega • anioonvahetajad - kvaternaarsed amiinid • katioonvahetajad - sulfonaatrühmad • môlemad rühmad dissotseeruvad täielikult ja sôltuvus pH-st puudub

  31. Ioonkromatograafia: • anorgaaniliste ioonide analüüs • Kasutusel on spetsiaalne täidis: polümeerne alus (divinüülstüreen, diameeter 10 m), mis on sulfoneeritud vôi amineeritud. Elektrostaatiliselt seotakse sellega amineeritud vôi sulfoneeritud polümeeri kile (100-300 nm kiht). • supressorkolonn vähendab eluendi juhtivust: • anioonkromatograafias - katioonvahetus kolonn (H+-vormis) vahetab eluendi (nôrga happe soolad) katioonid H+ ioonidega ja tekkinud nôrka hapet juhtivusdetektor ei detekteeri • katioonkromatograafias - anioonvahetuskolonn (OH- - vormis) vahetab eluendi (HCl) aniooni OH- rühmadega ja vett ei detekteerita • eluendid: • anioonkromatogaafias: salitsülaat, boraat, bikarbonaat • katioonkromatograafias: HCl • detektorid: juhtivusdetektor, UV detektor

  32. Ioonkromatograafia rakendused • laialt kasutatav anioonide määramiseks vee analüüsil, (näit. elektrijaamades)

  33. Ioon-paarkromatograafia • Alternatiiv ioonkromatograafiale. Sageli efektiivsem. • Viiakse läbi pööratud faasi kolonnis, eluendile lisatakse hüdrofoobset vastasiooni. (N. sulfoonhappeid saab pööratud faasi kolonnis lahutada kui eluendile on lisatud tetrabutüülammoonium soola) • Ioonpaari lahutusmehhanism: hüdrofoobsed vastasioonid adsorbeeruvad liikumatusse faasi ning moodustavad ekvivalendi ioonvahetuskolonnile. • Eluentideks on enamasti vesilahustest puhvrid, mis vŏivad sisaldada orgaanilist solventi. • Puhvri pH ja orgaanilise aine sisaldus mŏjutavad osakeste elueerumist. • Eluendi tugevus kasvab orgaanilise solvendi kontsentratsiooni kasvuga. • Analüütide retentsiooniajad pikenevad vastasiooni kontsentratsiooni kasvamisega.

  34. Eksklusioonkromatograafia (exclusion chromatography, gel permeation chromatography) • kasutatakse makromolekulide molekulaarkaalu jaotuse analüüsil • kolonni täidised on poorsed materjalid: silikageel, poorne klaas, stüreendivinüül polümeer, • kolonni täidise poorsus varieerub suurtes piirides (4 m – 250 m) • väga suured molekulid ei sisene pooridesse – elueeruvad kiiresti • väikesed molekulid jäävad kinni paljudesse pooridesse ja elueeruvad aeglaselt • vahepealse suurusega molekulid sisenevad osadesse pooridesse ja osadesse nad ei mahu ning nende retentsiooniaeg on suurte ja väikeste molekulide vahepealne • analüüsitavate molekulide molekulkaal 4m pooridel 1000 – 8000 • 250 m pooridel 200 000 – 1 500 000 • eluent: pH < 9, peab lahustama analüüsitavaid aineid • detektor: HPLC detektorid

  35. Afiinsuskromatograafia: • Tahke kandjaga on seotud kovalentselt afiinsusligand (biokeemiline ühend), mis selektiivselt seob teatud proovi komponendid. Ülejäänud proov elueerub kolonnis sorbeerumata. • Väga suur selektiivsus, mis on kasulik preparatiivseks tööks. • Tahked kandjad on hüdrofoobsed: agaroos, tselluloos, polüakrüüamiid • ligandid: ensüümid, antikehad • seotud ühendite elueerimine: ligandi lahuse abil

More Related