110 likes | 219 Views
„D” modul: Mikrosebészet Célok. alapvető mikrosebészeti technikák és a speciális mikrosebészeti eszköztár bemutatása, megismerése. manuális készségek fejlesztése, szem-kéz koordináció javítása
E N D
„D” modul: MikrosebészetCélok • alapvető mikrosebészeti technikák és a speciális mikrosebészeti eszköztár bemutatása, megismerése. • manuális készségek fejlesztése, szem-kéz koordináció javítása • végső cél: a hallgatók képesek lesznek 0,7-1,2 mm külső átmérőjű ér- és idegképletek kipreparálására, egyesítésére, anastomosis létrehozására.
Az operációs mikroszkóp beállítása Célok: Kényelmes ülőhelyzet elérése a mikroszkópnál. Ülés egyenes háttal, az alkar támasztása az asztalon. • Csökkentsük a fényintenzitást a minimumra. • Állítsuk be az okulárt 0 dioptriára. • Állítsuk be az interpupilláris távolságot. • Állítsuk be a finom fókuszt. • Válasszuk a legalacsonyabb nagyítást és állítsuk be a fókuszt. • Állítsuk be a fókuszt a legnagyobb nagyításon is. • Váltsunk vissza a legkisebb nagyításra és anélkül, hogy a finom fókuszt módosítanánk, korrigáljuk a dioptria eltéréseket a két szem között.
Kéz és eszköztartás gyakorlása • Lépések • A munka során csak az ujjaink és csuklónk mozognak, az alkarnak stabil felületen kell támaszkodnia. Így a felesleges mozdulatokat és bizonyos mértékig a tremort is kiiktathatjuk. • Az eszközök tollszárfogással tartjuk, melyben a három ujj, a hüvely-, a mutató és a középső ujj vesz részt. A könyök, az alkar ulnáris oldala és a csuklók a felszínen nyugszanak. • A karok 60-90 fokos szöget zárnak be egymással, miáltal az alkarok enyhe supináló tartást vesznek fel.
Szálfűzés gézhálón • Két írisz csipesszel a gyakorlótáblára vízszintesen rögzített gézlap egyik függőleges szálát kifejtjük a hálóból. • Ezután a szálat visszafűzzük eredeti helyére. Figyeljünk arra, hogy mindkét kezet azonos mértékben használjuk. Minél többször fogjuk meg a szálat és gyakoroljunk több irányban. Cél, hogy a gyakorlat végén ne legyen látható, hogy a függőleges szálat valaha is eltávolítottuk.
8 6 7 2 1 3 4 5 1 1 7 4 3 5 2 6 8 2 Anastomosis modellek élettelen rendszerben End-to-end és end-to-side anastomosis szilikon csövön (2 és 1 mm külső átmérőnél) Elülső és hátulsó hátsó fal Elülső fal Hátsó fal
Éranastomosis ex vivo Lépések • A kipreparált eret nedves gézlapra helyezzük (folyamatosan nedvesen tartjuk a beavatkozás során). • A mikroszkópot nagy nagyításra állítjuk, a kipreparált eret két approximátor klip közé fogjuk, majd tengelyére merőlegesen ollóval kettévágjuk. • A lument mindkét érvégnél heparinos oldattal átöblítjük. (100 U/ml). • Az adventitiát csipesz és olló segítségével az érvégtől néhány milliméter távolságig eltávolítjuk. • Az öltések behelyezése: Ex vivo és in vivo körülmények között egyaránt összesen nyolc öltéssel egyesítjük a végeket a fenti méretű érnél (a fentivel megegyező sorrendben). • A vízhatlanság ellenőrzése.
Éranastomosis ex vivo Lépések • A kipreparált eret nedves gézlapra helyezzük (folyamatosan nedvesen tartjuk a beavatkozás során). • A mikroszkópot nagy nagyításra állítjuk, a kipreparált eret két approximátor klip közé fogjuk, majd tengelyére merőlegesen ollóval kettévágjuk. • A lument mindkét érvégnél heparinos oldattal átöblítjük. (100 U/ml). • Az adventitiát csipesz és olló segítségével az érvégtől néhány milliméter távolságig eltávolítjuk. • Az öltések behelyezése: Ex vivo és in vivo körülmények között egyaránt összesen nyolc öltéssel egyesítjük a végeket a fenti méretű érnél (a fentivel megegyező sorrendben). • A vízhatlanság ellenőrzése.
Éranastomosis in vivo end-to-end preparálás end-to-side adventitia lefejtése átjárhatósági tesztek