MADUREZ SEXUAL EN PECES

1. MADUREZ SEXUAL EN PECES Docente: Blgo. Acui. Carmen Yzásiga Barrera Blga. Pesq. Eliana Zelada Mazmela

2. Definición Capacidad que alcanza un org. para reproducirse. Org. sexualmente maduro: Gónadas salen de su latencia y desarrolla presentando cambios óvulos espermatozoides Se hacen evidentes por los cambios morfológicos que se detectan a simple vista

3. Biología Pesquera Recurso renovable Potencial rep. Se mantenga en niveles adecuados Acuicultura Recurso renovable Abastecimiento sostenido de semilla Periodo de freza de sps. económicamente importantes Manejar la rep. en cautiverio con hechos comprobados MADUREZ SEXUAL Grado de madurez de gónadas

4. CICLOS DE MADUREZ SEXUAL Prod. Sex gónadas Con períodos variables • El desarrollo Características de c/sp. • 1er desove • Intervalos entre desoves sucesivos • e.g.: • Lebistes sp. puede desovar en intervalos de 4 semanas aprox. • Gambusia sp. pta. Intervalos de tiempo de varios meses entre desoves - Mayoría de sps presentan ciclos de reproducción anuales o bianuales

5. Determinan: madurez sexual, maduración, desoves. • Carácter genético • Fisiología de la Reproducción • Fotoperiodo • Tº • Corrientes, etc Ciclo reproductor Factores intrínsecos Factores extrínsecos

6. Para describir el ciclo de madurez sexual Clasificación estadíos numeración Gónadas inmaduras (I) Gónadas intermedias (II) Gónadas maduras (III) Gónadas post-desove (IV)

7. I IID IIR III VIII IV VII V VI Virgen I IID IIR desarrollo desove desarrollo desarrollo VIII inicio inicio III VII Oocito sin forma definida Descanso hidratados IVR desarrollado IVD VI Termino desove Ovocito + gde Gravidez V Desove Desovadores totales Desovadores parciales

8. PRIMERA MADUREZ SEXUAL ♀ : oocitos vitelogénicos  ovulación Aparece 1° vez Inicial final ♂ : espermatocitos  espermiación Maduración prematura: gametogénesis incompleta o desarrollo gonadal tentativo Importancia: • Conocer y manejar el inicio de la pubertad en peces permite: • Retrasar  peces crecen más. (lubina, carpa, etc.) • Adelantar  peces que demoran en alcanzar la pubertad (esturión, atún, etc.)

9. Señales metabólicas Factores ambientales Factores genéticos INICIO DE LA PUBERTAD Señal integradora Liberación GnRH Activación del Eje C-H-G Liberación FSH y LH Gametogénesis y esteroidogénesis Madurez sexual

10. ¿Quién activa el sistema GnRH? Señ. ambientales Señ. endógenas Neuronas kispeptinas “Procesadores centrales de retransmisión señales periféricas a las neuronas GnRH” Genes (Kiss – 1) • Dianas de esteroides sexuales: regulación de retroalimentación positivo y negativo. • Recibir información de reservas energéticas: leptinas Kispeptinas activan Neuronas GnRH GnRH

12. ¿Cómo determinar la 1° madurez sexual? • Momento en que el 50% de una población entran en fase de MS • Durante 1 año muestreos, agrupan todos los datos como un TODO, pero sexo separado • Ind. Jóvenes: gónada hasta estadíos II • Ind. Maduros: III  adelante

13. 1° Establecer la amplitud de varianza de la Lt 2° Dentro de esos límites, establecer de 12 a 20 clases de long. 3° Obtener para c/clase de long. la FR (%) de ind. jóvenes y adultos 4° 5° Ajústense los puntos hasta obtener una curva FR 50

14. Condicionada al tamaño particular de cada especie • Peces de pequeño tamaño y vida corta, alcanzan su MS a edades más cortas que las sps de mayor tamaño. • Reproducción 2 ó más veces/año  maduran más rápido que las que desovan 1vez/año • Micronetrus aurora: nace SM • P. reticulata: año 2,5 cm • Angilla : 10 – 14 años 50 cm • A. gigas: 4 años 120 cm • O.mykiss: 2 años 25 cm • Factores: luz, T°, alimento, stress

15. Determinación de la época de desove por análisis temporales de variación de f de diferentes estados de madurez Pesa, medir, estadío sexual 1° obtener mensualmente la distribución de f de individuos en c/estadío (N°) 2° Calcular la FR (%) mensual de c/estadío 3° Graficar Junto con IGS Primera madurez sexual FR mes

16. MÉTODOS PARA EVALUAR MADUREZ SEXUAL • Escalas empíricas: • Se asigna a los individuos características que se pueden diferenciar a simple vista • Elaboradas en base a características morfológicas externas: tamaño relativo a cav. abdominal, forma, color, textura, presencia o ausencia pigmento, etc.: Dormitator, Salmo • Rep. Totales: son aquéllos cuyos oocitos maduran sincrónicamente para ser ovulados en un solo período • Determinación sencilla.

17. Rep. Parciales: desove se desarrolla en un período más o menos largo. Ovario con oocitos en  estados de desarrollo: lenguado, anchoveta, paiche. • Tipificación parcialmente difícil, debido a que existe una gran variedad de fases de desarrollo en una gónada en todo momento y la diferenciación es menos precisa

18. La Mayor parte de escalas tienen cinco fases o etapas: Inmaduro, maduración inicial, maduración final, puesta y postpuesta. En viviparos: inmaduro, maduración inicial, maduro-fertilizado, extrusión larvaria, postpuesta y recuperación. Ptan desarrollo de mixopterigios (organos copuladores) • Ventajas : • Sencillo • Barato • Rápido • Desventajas : • Sujetivo • No siempre preciso

20. Diferentes estadíos de madurez sexual en machos de “jurel”

21. Diferentes estadíos de madurez sexual en hembras de “jurel”

22. B) Escalas microscópicas: • Cortes histológicos, •  oocitos, • Afinidad x colorante, • Presencia o ausencia de estructuras: vesículas vitelinas. • Características detallada del ciclo reproductor, ovario se clasifica por el estado más avanzado presente y no por frecuencia. • Interpretación difusa debido a diferente terminología.

23. Marza (1938) clasificó el ritmo de desarrollo de los oocitos en tres grupos: • Sincronismo total:Petromizon sp. Onconhynchus mason • Grupo sincrónicos: arenque, perca, pejerrey • Asincrónico: sardina, anchoveta

24. C) IGS: También llamado coeficiente de madurez Representa la relación en porcentaje del peso de las gónadas y el peso del cuerpo. Determina principalmente el grado de madurez de las gónadas. Período de desove y fluctuaciones estacionales: Análisis de IGS en el tiempo Refleja el estado de los ovarios con respecto al almacenamiento de reserva.

25. WG WT IGS = X 100 WG (WT) esvicerado Puede determinarse en relación al peso corporal total ó eviscerado, en éste caso se minimiza el error debido a que se eliminan las influencias de las variaciones del peso del contenido estomacal en el peso corporal. ES NECESARIO DEFINIR CUAL DE LAS DOS FORMULAS UTILIZAR.

26. D) EXAMEN DE OOCITOS E E M2 M f f M1  oocito  oocito 1.- Inmadura: < 0,25mm 2.- madura: 0,30 - 0,90 mm 3.- totalmente maduros: 1,20 - 1,80 mm

27. E) INDICE HEPÁTICO (HSI): • Peso de hígado/ peso corporal (%). • Cuantifica cambios en hígado por producción de vitelogenina, pta. comportamiento contrario a IGS • Solo para especies en donde el hígado juega un papel importante en la acumulación de reservas alimenticias

28. Factores bióticos Factores abióticos • ESTADO FISIOLÓGICO • VARIA interacción Fc condiciones alimentarias recientes varía con el ciclo de MS • Si se admite que peces crecen isométricamente  Fc se puede comparar en todos los tamaños. Pero con peces maduros (no es isométrico) es poco posible hacer la comparación K1. IG, IGS valores calculados ind. K= W L X 10 FACTOR DE CONDICIÓN

29. Pequeñas variaciones de K tienen importancia biológica  cálculo preciso Variaciones de K en el ciclo MS puede fortalecer las indicaciones sobre época reproducción

30. EDAD 1 ° MADUREZ SEXUAL Tilapia sp. Alcanza madurez sexual en pocos meses Arapaima gigas Demoran mas tiempo en alcanzar la primera madurez sexual Climas fríos = retrasa Climas calidos = acelera 1 ° Madurez sexual Climas tropicales y subtropicales = 1 año Europa central y oriental = 3 años e.g. : Carpa común Climas tropicales y subtropicales = 1 – 2 años Europa = 5 a 7 años (5 a 7 kg) Carpa china

31. DIMORFISMO SEXUAL

32. Es más característico en machos • Ninguna dificultad: D. latrifons, tilapia, O. mykiss, Coryphaena hippures • Mayoría  exponer gónada  difícil en fase temprana • Desarrollo gonadal acompañado de caracteres sexuales: • - Tamaño • hembra > macho (Fam. Ceratidae: enano parásito) • En sps con cuidado parental NO (Silúridos, cíclicos) - Long. y forma de aletas: L. bimaculata : anal grande y redondeada en machos D. latifrons : papila hembras  con flecos Machos 

34. Aequidens rivulatus dorsal y anal más largas en machos

35. Oncorhynchus mykiss

37. Apistogramma spp

38. DIVISIÓN DE LOS CARACTERES SEXUALES SECUNDARIOS • C. Temporales: aparecen sólo en la estación de desove: coloración nupcial, órganos perlas, etc. • C. Permanentes:Desarrollados permanentemente: gonopodio

39. CONSIDERACIONES BIOENERGÉTICAS DE LA REPRODUCCIÓN Aprox. 75 % E ingerida es digerida Excreción (orina) Energía metabolizable (Neta) Metabolismo basal (26 %) Metabolismo activo (16%) Crecimiento (0 – 18%) Reproducción (0 – 18%)

40. Reparto del consumo energético • Supervivencia • Crecimiento • Reproducción Energía Tras primera M.S. no tienen suficiente E para supervivencia Sps. Semélparas: Sps. Iterópara: Tras primera M.S. tienen suficiente E para supervivencia, crecimiento y reproducción

41. Dedican mayor cantidad de energía para reproducción Sps. de vida corta Sps de vida larga Dedican mayor cantidad de energía para crecimiento

42. Bioenergética de la reproducción • Formación de caracteres sexuales secundarios • Comportamiento reproductivo • Formación de gónadas y productos sexuales Gasto E en la reproducción • Caracteres sexuales secundarios: • Usados para la lucha territorial entre machos. • Para el reconocimiento entre especies • Elección de pareja

43. Comportamiento reproductivo: • Migraciones en busca de alimento para la prole • Movimientos para la elección del lugar de reproducción • Preparación del lugar de freza • Defensa del nido • Cortejo • Cópula • Cuidado parenta

44. Bioenergética de la maduración del ovario: C = Ps + Pr + R + F + U C = contenido energético del alimento R = pérdida de la E en forma de calor durante el metabolismo F = pérdida de la E en las heces U = pérdida de E en productos de excreción Ps = E destinada a crecimiento somático Pr = E destinada a la reproducción

45. Para un mismo contenido energético en el alimento (C) y asumiendo R, F y U constantes, es evidente que una mayor asignación energética al crecimiento debe ser compensada con una menor cuota energética destinada a la reproducción C = Ps + Pr + R + F + U SPS viven en zonas con alimento constante todo el año pez crece C = Ps+ Pr + R + F + U Pez se reproduce

46. ¿ sps de aguas frías y templadas? Desoves sólo en primavera y verano: abundancia de alimento Sincronizan eclosión larvaria con los ciclos de producción de plancton Desarrollo gonadal se da en invierno Invierno C = Ps + Pr + R + F + U E proviene de reservas acumuladas en forma de CHON y Lípidos

47. E.g. : Bacalao Incrementa su tamaño durante el verano y otoño.  formación de CHON y Lípidos (hígado) Durante el invierno (maduración) hasta la primavera (desove) estas reservas se van consumiendo. CHON acumulación de vitelo Lípidos metabolismo general

48. Platija: Hígado pequeño reservas se depositan en el músculo 25 % de CHON musculares se consumen en invierno la mayor parte para vitelogénesis y menor parte para metabolismo. 55% de Lípidos musculares se consumen para metabolismo general del individuo. Se observan cambios drásticos en la composición de los tejidos

49. Madurez sexual en condrictios Ciclo ovárico: comprende el periodo el término de una ovulación hasta la siguiente. Periodo de gestación: Desde la fertilización hasta el parto La mayoría de las sps presentan ciclos de reproducción anuales. 1° reproducción: periodos largos de vitelogénesis y gestación. 2° a más reproducción: periodos se acortan. Pueden ser simultáneos

50. Determinación de madurez sexual en condrictios • Tamaño de folículos: Señales subjetivas • Diámetro de ovocitos • Niveles hormonales en sangre: más preciso