650 likes | 1.71k Views
Mécanismes d’échanges d’informations génétiques chez les procaryotes. Transfert horizontal de gènes chez les procaryotes. 3.1 La transformation. Découverte : Fred Griffith (1928). F. Griffith, 1928. The significance of pneumococcal types. J. Hyg. 27, 113-159. D’après G. Bourdonnais
E N D
Mécanismes d’échanges d’informations génétiques chez les procaryotes GEF L2S4 2008-2009
Transfert horizontal de gènes chez les procaryotes GEF L2S4 2008-2009
3.1 La transformation Découverte : Fred Griffith (1928) F. Griffith, 1928. The significance of pneumococcal types. J. Hyg. 27, 113-159 GEF L2S4 2008-2009 D’après G. Bourdonnais Cegep de Ste Foy,Canada
Conclusions de Griffith • Les bactéries S mortes ont transmis un facteur transformant les bactéries R en bactéries S • Nature du facteur transformant?? GEF L2S4 2008-2009
Expérience d’Avery (1940) D’après G. Bourdonnais Cegep de Ste Foy,Canada Le facteur transformant est constitué d’ADN GEF L2S4 2008-2009
La transformation naturelle • nécessite mise en place d’un état physiologique particulier : état de compétence • entrée ADN nu dans la cellule • recombinaison homologue si et seulement si homologie entre endogénote et exogénote GEF L2S4 2008-2009
Mécanismes moléculaires de la transformation a) mise en place de l’état de compétence Production et excrétion du facteur de compétence Absorbtion du facteur de compétence sur les sites récepteurs 3. Activation des gènes spécifiques de la transformation 4. Synthèse d’une autolysine 5. L’autolysine démasque la nucléase et la protéine de liaison à l’ADN GEF L2S4 2008-2009
Mécanismes moléculaires de la transformation b) Entrée et intégration de l’ADN dans la cellule compétente GEF L2S4 2008-2009
La compétence des bactéries (1) • Étude chez S. pneumoniae • Durée limitée (10-15 min) • Fin de phase exponentielle Log UFC/mL État de compétence temps GEF L2S4 2008-2009
La compétence des bactéries (2) • Excrétion de facteur de compétence (fc) • synthèse récepteurs à la surface de la cellule • Fixation fc sur la cellule qui l’a synthétisé et sur cellules voisines • Nombre de récepteurs varie selon espèces • % cellules compétentes varie selon espèces GEF L2S4 2008-2009
Prise en charge de l ’ADN par les cellules compétentes S. pneumoniae sensibles à pénicilline + ADN extrait de bactéries résistantes à pénicilline + ADN thymus de veau • non spécifique • seul ADN db est reconnu UFC/mL résistantes ADN dénaturé ADN natif [ADN] thymus de veau GEF L2S4 2008-2009
Exogénote : addition ou substitution? Sélection A+ a- A+ Taux de tf = L Transf ADN de A+ A+ : caractère dominant Sélection a- a- A+ Taux de tf =M Transf ADN de a- L = M donc substitution GEF L2S4 2008-2009
Les m.o. procaryotes naturellement compétents • Une quarantaine d’espèces répertoriées appartenant aux bactéries et aux archaées • Gram + : S. pneumoniae, S. aureus,B. subtilis, Lactibacillus lactis, … • Gram- : N. gonorrhae, Vibrio sp, P. stutzeri,… • Archae : Methanobacterium thermoautotrophicum, Methanococcus voltae GEF L2S4 2008-2009
Rôles de la transformation naturelle? (1) • Réparation ADN UV B A TT B lysée - ADN de cellule B retrouvé dans ADN de cellule A : réparation - Rec A activée GEF L2S4 2008-2009
Rôles de la transformation naturelle : formation des gènes mosaïques • Comparaison de l’ADN de différentes souches de S. pneumoniae sauvage Mutant 1 Mutant 2 Sp1 Sp2 Sp3 GEF L2S4 2008-2009
Transformations dans l’environnement • évolution des micro-organismes en conditions • environnementales • - devenir des mo génétiquement modifiés GEF L2S4 2008-2009
La transformation artificielle • Traitement CaCl2 et choc thermique • Choc électrique : électroporation GEF L2S4 2008-2009
Échanges d’informations génétiques entre cellules Transformation 2. Conjugaison 3. Transduction GEF L2S4 2008-2009
Expérience de Lederberg et Tatum (1946) GEF L2S4 2008-2009
Expérience de Davies (1950) • pas de recombinants isolés si les • souches A et B sont séparées par • un filtre imperméable aux bactéries Souche A Souche B Conjugaison nécessite contact entre cellules GEF L2S4 2008-2009
Sens du transfert ? Expérience de Hayes (1952) • Souche A SmR + souche B SmS • MM : qq colonies • MM + Sm : 0 colonies • Souche A SmS + souche B SmR • MM : qq colonies • MM +Sm : qq colonies • Transfert à sens unique • Transfert de A vers B GEF L2S4 2008-2009
Facteur sexuel F = plasmide F Opéron tra Synthèse des pilis :traA, traL, traE, traK, traB, trav, traC, traW, traU, traF, traQ, traH, traG, exclusion de surface : traS, traT, Transfert de l’ADN (gènes mob): traM, traY, traD, traI, traZ Régulation : finP, finO, traJ Insertion dans le chromosome replication GEF L2S4 2008-2009
Opéron tra très proche de celui du plasmide F Résistances aux antibiotiques et métaux lourds Le plasmide R100 GEF L2S4 2008-2009
Les plasmides conjugatifs • Autotransférables • ADN circulaires autoreplicatifs • Très répandus dans les bactéries et archaées • Une bactérie peut en héberger entre 0 et une dizaine • Peuvent héberger des fonctions diverses : résistances antibiotiques ou composés toxiques, opérons métaboliques, interactions avec autres bactéries (symbiose, virulence), etc.. GEF L2S4 2008-2009
Mécanisme de conjugaison Formation couple de conjugaison : gènes tra Transfert de l’ADN : gènes mob GEF L2S4 2008-2009
Transfert de l’ADN GEF L2S4 2008-2009
Les souches Hfr GEF L2S4 2008-2009
Pont cytoplasmique Les différents « destins » du plasmide F D’autres plasmides conjugatifs se comportent de la même manière! GEF L2S4 2008-2009 D’après D. Bryant, Univ. MacGill, Canada
La formation des souches « haute fréquence de recombinaison » (Hfr) GEF L2S4 2008-2009
Initiation de la mobilisation de marqueurs chromosomiques GEF L2S4 2008-2009
C B D R A C B D A Mobilisation de marqueurs chromosomiques c B b A a R c B A R GEF L2S4 2008-2009
Différentes souches Hfr GEF L2S4 2008-2009
Carte chromosomique E.coli K12 établie grâce à l’étude des dérivés Hfr GEF L2S4 2008-2009
C B D R A C B D A Pourquoi le marqueur SmR n’est-il pas passé dans l’expérience de Hayes? SmR c B SmR b A a R c B A R GEF L2S4 2008-2009
Conjugaison-mobilisation Transfert de replicons non-conjugatifs à l’aide d’un plasmide conjugatif « helper » GEF L2S4 2008-2009
Mobilisation par donation (A) et conduction (B) GEF L2S4 2008-2009 D’après la thèse de Barbara Albiger, ULP, 1999
Exemples de mobilisation • Plasmides non-conjugatifs : par donation et conduction • Gènes chromosomiques via Hfr : par conduction GEF L2S4 2008-2009
Échanges d’informations génétiques entre cellules Transformation 2. Conjugaison 3. Transduction GEF L2S4 2008-2009
Découverte : Zinder et Lederberg (1951) Souche A : S. Typhimurium LT-22 (P22) : try- Souche B : S. Typhimurium LT-2 : his- Souche A Souche B Isolement de bactéries prototrophes try+ à partir de la souche A Filtre : perméable à ADN, virus mais pas bactéries Agent filtrable : - insensible à DNAse, - possède caractéristiques physiques de P22 - inactivé par sérum anti-P22 GEF L2S4 2008-2009
Transduction généralisée GEF L2S4 2008-2009
Transduction généralisée • Existe chez nombreuses bactéries G+ et G-, • Insertion de l ’ADN exogène : recombinaison homologue • Transduction effective si [phages] <<<[ bactéries] • Efficacité de transduction inversément proportionnelle à efficacité de la nucléase phagique • Proportion transductants : • 0,3%/cell. réceptrices pour P1 • 1-5%/cell. réceptrices pour P22 GEF L2S4 2008-2009
Transduction spécialisée GEF L2S4 2008-2009
Transduction dgal, pbio GEF L2S4 2008-2009
Transduction spécialisée dgal : perte de gènes impliqués dans la synthèse de nouvelles particules phagiques (défectif gal), toujours lysogènes, mais uniquement infectieux en présence particules phagiques « helper » pbio : perte gènes int et xis, toujours infectieux (plages bio), mais uniquement lysogène en présence de particules phagiques « helper » GEF L2S4 2008-2009