Uji Kontaminan Mikroba dalam Pangan

1. UjiKontaminanMikrobadalamPangan Sudrajat FMIPA UNMUL SAMARINDA TAHUN 2010

2. Mikrobia pada bahan makanan • Terdiri dari berbagai spesies yang berasal dari berbagai lingkungan • Populasinya tergantung dari penerapan proses sanitasi, proses pengolahan dan kontrol yang digunakan untuk membunuh mikrobia (metoda preservasi)

3. Tujuan melakukan analisa mikrobiologi • Menentukan jenis dan sumber kontaminan • Evaluasi proses sanitasi, penanganan bahan dasar dan proses pengolahan • Menentukan kualitas mikrobiologis makanan • Menentukan umur simpan makanan

4. Microorganisms in food (food-borne microorganisms) Beneficial/ desirable e.g. Lactic acid bacteria in fermented food Deteriorated/ undesirable Pathogenic or Toxigenic Non-pathogenic Spoilage m.o. but can cause diseases e.g. Bacillus sp.in milk Indicator of pathogens e.g. Escherichia coli

5. Sistem Pengawasan Makanan Oleh BPOM-RI • Pemberian Nomer Registrasi BPOM-RI - Makanan/Minuman : MD (dalam), ML (import) 12 digits - Obat-obatan : D (dalam), DL (obat import) - Kosmetika : CD (dalam), CL (kosmetik import) - Alat kesehatan : KD (dalam), KL (alat import) - Obat tradisional : TR • Melakukan uji laboratorium sampel makanan - Uji kandungan (komposisi) gizi - Uji fisika kimia - Uji mikrobiologi - Uji bahan berbahaya dan beracun

6. Sources of bacterial contamination RAW FOOD PESTS P R E P PEOPLE ENVIRONMENT Staff, customers Vegetables, meat, shellfish, water Soil, dust Insects, rodents, animals, birds

7. 7

8. 8

9. Food-borne pathogens Bacteria • Salmonella spp. • Shigella spp. • Staphylococcus aureus • Enteropathogenic E. coli • Clostridium botulinum, Cl. perfringens • Vibrio cholerae, V. parahaemolyticus • Bacillus cereus • Campylobacter jejuni • Yersinia enterocolitica

10. Food borne pathogens produce mycotoxins Aspergillus sp. Penicillium sp. Fusarium sp. • Fungi • Parasites • Toxocara canis • Amoebae

11. Food-borne diseases Food poisoning Pathogen’s cells Toxin Botulism: Clostidium botulinum Campylobacteriosis: Campylobacter jejuni E. coli infection: E. coliO157:H7 Salmonellosis: Salmonellae Shigellosis: Shigellae Other diseases caused by viruses: Hepatitis A, poliomyelitis, etc.

12. Food poisoning Symptoms abdominal cramps nausea vomiting diarrhoea fever dehydration Diagnosis examination of the faeces and suspected food samples

13. Total heterotrophic plate count Growth on detection media Most Probable Number Testing Methods Culture-dependent techniques Sample with Bugs Culture-independent techniques Optical Nucleic Acid-Based Immunological Methods Chemical

14. Kriteria mikrobiologis makanan • Standard – bagian dari regulasi • Spesifikasi – untuk spesifikasi purchasing • Guideline – digunakan untuk monitoring proses atau sistem

15. Pengenalan alat-alat laboratorium mikrobiologi 1. Peralatan sterilisasi a. Sterilisasi kering : alat gelas, cawan Petri, pipet. Alat yang digunakan berupa oven yang suhunya dapat mencapai 180 oC. b. Sterilisasi basah : untuk sterilisasi media, larutan, kapas, lap, dsb. Peralatan yang umum digunakan adalah autoklaf.   c. Sterilisasi saring. untuk sterilisasi cairan yang rusak bila kena panas (misal larutan vitamin)  2. Alat menghitung koloni Quebec Colony Counter3. Laminar flow (untuk memindahkan mikrobia secara aseptis) 4. Spektrofotometer : untuk mengukur kekeruhan yaitu dengan cara mengukur sinar yang lewat pada media cair  mengukur konsentrasi mikrobia pada media cair. 5. Mikroskop

16. Ketrampilan dasar • Persiapan/pembuatan media • Sterilisasi dan penanganan/pembuangan limbah • Metoda aseptik (aseptic transfer – untuk memindahkan kultur) • Penyimpanan mikrobia • Kultur dalam agar miring • Deep freeze (dg cryoprotectant) • Liofilisasi (dalam ampul)

17. Sterilisasi • Sterilisasi – basah, kering, filtrasi • Sterilisasi basah / uap panas kombinasi suhu, tekanan dan waktu (121C, 15 mnt, 15 lbs/square inch) • Sterilisasi kering untuk alat-alat gelas • Sterilisasi dengan uap panas dilakukan pada media yang akan digunakan baik sebelum dan sesudah inokulasi dengan mikrobia

18. Metode aseptis dan teknik isolasi • Kultur murni: apabila kultur ini hanya terdiri dari satu spesies mikrobia saja. • Jika spesies mikrobia yang lain secara tidak sengaja masuk ke dalam kultur murni, kultur tersebut dikatakan telah terkontaminasi, dan tidak lagi dikatakan sebagai kultur murni tetapi kultur campuran.

20. Isolasi dengan cara goresan Hasil goresan yang baik Cawan - terkontaminasi Goresan yang berasal dari dua jenis bakteri Cara goresan yang salah Koloni kurang terpisah

21. Koloni bakteri :Morfologi (bentuk dan struktur) Bentuk dan ukuran koloni : irreguler Margin/edge : undulate/wavy Elevataion : umbonate Warna : putih Tekstur : dry (rough)

22. Metoda Kuantitaif • Enumerasi atau estimasi langsung atau tidak langsung • Aerobic Plate Counts (standard plate counts untuk dairy products), anaerobic counts, psychrotrophic counts, thermoduric counts, coliform counts, S. aureus counts, yeast and mold counts.

23. Enumerasi langsung • Microscopic Counts • CFU – Colony Forming Unit • Nonselective agar media (PCA) • Nonselective differential agar media • Selective agar media • Selective differential agar media

24. Enumerasi tidak langsung • MPN • Dye reduction test • Pengenceran - nonselective media cair – jarang digunakan

25. Metoda Kualitatif • Bakteri patogen (positif atau negatif) • Salmonella, E. coli O157:H7, Clostridium botulinum, Listeria dll

26. Metoda Cepat • ELISA • Nucleic Acid Probe

27. Deteksi mikrobia pada makanan • Total mikrobia (bakteri, yeast, jamur/mold) • Bakteri indikator • Coliform, fecal coliform, E. coli, Grup Enterobacteriacea Enterococci • Bakteri pathogen • Classical pathogen (Salmonella, Shigella, EPEC E. coli • Emerging pathogen (Vibrio, Listeria monocytogenes, Yersinia, Campylobacter jejuni, dll) Kriteria bakteri indikator dan pathogen Berkaitan dengan feses dan pathogen enterik Level/rasio eksistensinya pada feses, bakteri indikator dan enterik Resistensinya terhadap lingkungan (habitat) alami (feses dan makanan) Resistensinya terhadap berbagai kondisi (proses dan penyimpanan makanan) Waktu yang dibutuhkan untuk deteksi

28. Penghitungan mikrobia dalam bahan pangan • Uji coliform dengan MPN • Pencemaran air mengapa coliform ? • Pengujian : • Uji pendugaan (presumptive tests) • Uji penetapan (confirmation tests) • Uji lengkap (completed tests)

29. Uji mikrobiologi pada bahan makanan 7 Total mikrobia (bakteri, jamur, yeast) 6 Plate Count 5 4 3 2 Bakteri indikator : Coliform/E.coli 1 MPN 0 -1 Bakteri patogen -2 Media resusitasi -3 Media diperkaya -4 Media selektif -5 Isolasi dan identifikasi -6 Log jumlah sel

30. Ada beberapa variasi pada enumerasi dengan cara ini, yaitu : 1.Pour plates 2.Spread plates

31. Dilution and Plate Count (1)

32. Dilution and Plate Count (2)

33. Prosedur Sampling • Gunakan wadah yang steril • Jaga tangan selalu bersih dan kering • Jangan membalik atau menjatuhkan tutup botol • Jangan memasukkan plastik sampel yang belum steril kedalam saku baju • Jangan mengkontaminasi bagian atas ataupun bagian dalam plastik sampel. • Cuci peralatan sampling sebelum digunakan • Isi didalam wadah tidak lebih dari 2/3 atau 3/4 –nya • Jangan memegang wadah (belum tertutup) melewati permukaan sampel ketika sampel tersebut dipindahkan • Dinginkan sampel pada suhu 0-4,4oC • Pindahkan sampel dalam wadah untuk pengiriman ke laboratorium • Setelah digunakan, kembalikan wadah sampel ke laboratorium untuk disterilkan kembali

34. Standard Plate Count (SPC) Standard di dalam equipment, material dan inkubasi Equipment – tempat kerja, kabinet, refrigerator, termometer, transfer pipet, botol untuk pengenceran, cawan Petri, timbangan, waterbath, autoclave, inkubator, dll Penyimpanan sampel suhu 4,4 C, waktu pengujian < 36 jam Media – Standard method agar (Plate count Agar) Pancreatic digest of casein (tripton) 5,0 g Yeast extract 2,5 g Glucose 1,0 g Agar 15,0 g DW s/d 1 liter pH (setelah sterilisasi) 7.0 + 0,2 Inkubasi 32 + 1C, 48 + 3 jam untuk mesofilik Untuk termofilik : 55 + 1 C selama 48 jam, sebagai TBC/ml atau g Untuk psikrofilik : 7 + 1 C selama 10 hari, sebagai PBC/ml atau g

35. Conventional techniques • Standard plate count: SPC • Homogenised food sample • Dilutions • Plate on suitable selective media • Incubate at ….oC, for… h. • Colony count Shelf-life analysis SPC = 106 CFU/ g or ml of product = spoilage or nearly spoilage

36. Conventional techniques • Most probable number: MPN • Growth in liquid medium • Based on 3 decimal dilutions (5 or 3 tubes at each dilution) • Number of positive (growth) tubes of each dilution • Find the MPN values in Table reference • Ex. Sample 1.0g, 0.1g, 0.01g=1,0,2 MPN/g = 11

37. Most probable number: MPN • Selecting 3 dilutions for Table reference • when more than 3 dilution are used, select only 3 dilutions according to 2 cases • 1. One or more dilution show all tubes positive • 2. No dilutions show all tubes positive • Conversion of Table units • Approximation of an unusual series of dilutions • Confidence interval

38. Rapid tests • Commercial kits: many • Faster than conventional method • e.g. the MMO-MUG method for coliform testing Negative Positive Negative Positive Total coliformE. coli

39. Molecular detection • Method • Food-->liquid/ solid media--o/n(16-24 h)--->DNA extraction-->PCR--->Hybridisation with specific probe • Has been used to detect • enteroinvasive E. coli and Shigella spp., V. vulnificus Hepatitis A virus, and V. cholerae in foods

40. Molecular detection • Hybridisation • Probe = DNA or RNA • Probe design: specific genes such as • probe labelling: radioactive, non-radioactive • No direct detection from food • Requires 105-106 copies of the target sequence to yield a clear, positive result • Polymerase Chain Reaction (PCR)